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Archenteron vs Gastrocèle

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Quelle est la différence entre « Archenteron » et « Gastrocoele ». Sont-ils identiques ou différents ? Gastrula est caractérisé par Archenteron ou Gastrocoele ou les deux ?


Coelom : Caractéristiques, types et mode de transmission

Dans cet article, nous discuterons du coelome d'Annelida :- 1. Particularités de Coelom 2. Types de coelome 3. Mode de formation 4. Coelome dans différents groupes 5. Points de vue concernant la formation Coelom 6. Importance.

Particularités de Coelom:

1. Au cours du développement, le coelome se présente sous la forme d'une scission dans le mésoderme qui se divise en deux couches, une couche somatique située à côté de l'épiderme et une couche splanchnique autour de l'endoderme.

2. Le cœlome est limité de tous côtés par l'épithélium cœlomique qui sécrète le liquide cœlomique.

3. La plus grande partie du cœlome forme la cavité périviscérale ou splanchnocèle.

4. C'est un espace rempli de liquide à l'intérieur duquel se logent les viscères.

5. En raison de cet emballage, les viscères restent indépendants des mouvements des muscles de la paroi corporelle.

6. Chez certains animaux supérieurs, une partie de la cavité périviscérale est maintenue séparée pour former des cavités restreintes dont la nature cœlomique ne peut et ne peut être réalisée que si leur histoire de développement est suivie.

7. Selon toutes les probabilités, les animaux coelomatisés ancestraux avaient des poches mésodermiques disposées en segments.

8. À partir de ces poches, des gamètes ont été formés par le processus de prolifération de la paroi épithéliale.

9. Plus tard, ces poches ont été modifiées dans leur structure et leur fonction.

10. L'évolution des poches mésodermiques est évidente dans les coelomates actuels.

Types de coelome:

Il existe trois types de coelome, tels que:

Cela signifie qu'il n'y a pas de cœlome ou de cavité remplie de liquide. L'espace entre l'intestin et la paroi corporelle est rempli par une sorte de tissu conjonctif dense dérivé à la fois de l'ectoderme et de l'endomésoderme (entomésoderme), appelé parenchyme. Les animaux sont sans cavité corporelle chez les animaux triplooblastiques, appelés acoelomates et le groupe est appelé acoelomata.

Gnathostomulida, Platyhelminthes et Nemertea, Gastrotricha, Kinorhyncha.

Cela signifie fausse cavité. La cavité corporelle remplie de liquide située entre l'intestin et la musculature de la paroi externe du corps et généralement formée par la persistance du blastocèle em­bryonique est appelée pseudocèle. Le terme « pseudocoélome » fait généralement référence à l'espace qui ne se développe pas à partir du mésoderme embryonnaire et non bordé par l'épithélium cœlomique dérivé du mésoderme.

La cavité corporelle est délimitée extérieurement par les processus fibreux des cellules musculaires longitudinales (mésoderme) et intérieurement par l'intestin (endoderme).

Le fluide pseudocœlomique agit comme un squelette hydrostatique pour maintenir la forme du corps et faire circuler les nutriments. Les animaux qui contiennent un pseudocoel sont appelés pseudocoelmates ou pseudocoelomates. Les animaux pseudocoélomates sont également appelés animaux hémocoélomates ou blastocoélomates (Brusca et Brusca, 2003).

Rotifera, Nematoda, Nematomorpha, Loricifera. Chez les petits nématodes libres, le pseudocèle est petit ou inexistant mais peut être volumineux chez les nématodes de grande taille. Le pseudocèle de Nematomorphos contient des cellules mésenchymateuses étoilées. Chez les rotifères, un pseudocèle spacieux rempli de liquide se trouve sous la paroi du corps et entoure l'intestin et d'autres organes internes.

(iii) Coelome ou Eucoelome :

C'est un véritable coelome situé entre l'intestin et la musculature de la paroi externe du corps et tapissé d'un épithélium coelomique dérivé du mésoderme embryonnaire. C'est une origine mésodermique et s'ouvre vers l'extérieur par les coelomoductes, par exemple, les oviductes et les canaux excréteurs. Le liquide cœlomique contient des cellules amiboïdes ou des amibocytes. Les animaux contenant une telle cavité corporelle ou coelome, appelés coelomates.

Sipuncula, Echiura, Priapulida, Mollusca, Annelida, Arthropoda, Onychophora, Phoronida, Brachiopoda, Bryozoa, Echinodermata, Chaetognatha, Hemichordata et Chordata.

Mode de formation du cœlome:

Selon le mode de formation du cœlome, il existe généralement deux types qui sont notés dans les protostomes et les deutérostomes :

Le processus par lequel le coelome apparaît par la division de bandes ou de masses méso-shydermiques au cours du développement em-shybryonique. Protostomie (par exemple, Mollusca, Sipuncula, Echiura, Priapulida, Annelida, Arthropoda, Tardigrada et Onychophora).

Processus par lequel le coelome est formé par l'évagination de l'archenteron embryonnaire. Les structures en forme de poche se détachent de l'archenteron et occupent progressivement tout le corps par élargissement.

Deutérostomie (par exemple, Echinochordata, Hemichordata et Chordata).

Ce type de coelome est originaire de Phoronida dans lequel le mesen­chyme se réorganise pour enfermer un endroit appelé coelome (Marshall et Williams, 1972). C'est une méthode inhabituelle de formation coe­lom. Il n'est ni entéro-coelome ni schizocèle.

Coelome dans différents groupes:

Dans Sipuncula, il y a deux cavités coelomiques, dont l'une est un coelome tentaculaire en forme d'anneau qui est situé à la base des tentacules et s'étendant sur trois branches dans chaque tentacule. Un autre est le coelome du tronc qui est spacieux et occupe la région du tronc séparée du coelome tentaculaire.

Le fluide cœlomique à l'intérieur du cœlome est en circulation constante par le mouvement des cils des cellules péritonéales et par la contraction du corps musculaire. Le liquide cœlomique contient des leucocytes errants, des cellules en forme de disque contenant de l'hémérythrine, des cellules reproductrices et des cellules excrétrices.

Comme les sipunculans, on trouve des types similaires de cavités coe­lomiques chez les échioures. Le coelome du tronc est spacieux et ininterrompu. Le cœlome est fluide est circulé par la contraction musculaire du corps et par les cils de la muqueuse cœlomique.

Chez les priapulida, il n'est pas clair si la cavité corporelle est un pseudocoelome ou un coelome. Le liquide de la cavité corporelle contient des amibocytes et des érythrocytes.

Chez Pogonophora, le coelome est compartimenté et étendu en tentacules. Le liquide cœlomique contient des pigments respiratoires et de l'hémoglobine.

Chez Onychophora, la cavité corporelle principale est un hémocèle, pas un vrai coelome. La cavité corporelle est connue sous le nom de mixocèle. Le vrai coelome est limité aux cavités gonadiques et aux organes excréteurs.

Chez certains animaux cœlomates tels que les mollusques et les arthropodes, les cavités du système vasculaire sanguin s'agrandissent considérablement et cet élargissement efface le coelome périviscéral et, par conséquent, les viscères se trouvent dans une cavité spacieuse remplie de sang.

Cette cavité remplie de sang est appelée hémocèle. Chez les mollusques, le coelome comprend un coelome péricarpien autour du cœur, un coelome gonadique et des conduits coelomiques appariés servent d'organes excréteurs. Chez les arthropodes, le coelome est représenté par la cavité des gonades et les organes excréteurs chez certaines espèces.

Dans les annélides, il y a une paire de sacs - les vésicules coelomiques droite et gauche se trouvant entre chaque segment de l'intestin et le segment correspondant de la paroi corporelle. Les cavités des vésicules coelomiques contiennent un fluide et des corpuscules et sont tapissées de péritoine dérivé de l'épithélium mésodermique. Chaque segment d'annélide a un mésentère dorsal, un mésentère ventral et un septum transversal.

Deux feuillets de péritoine se rejoignant sur la ligne médiane au-dessus et au-dessous de l'intestin forment respectivement le mésentère dorsal et le mésentère ventral. Le septum qui est un écran entre deux segments successifs est formé par la rencontre de deux feuillets péritonéaux à la limite entre les segments.

Le mésentère est composé d'un double pli de péritoine de l'épithélium cœlomique. A de rares exceptions, les cloisons et les mésentères forment une série complète de cloisons transversales ou longitudinales sur toute la longueur du corps de l'animal. Dans la plupart des cas, les cloisons sont perforées et les mésentères sont incomplets, de sorte qu'il existe une communication étroite entre la vésicule cœlomique et le cœlome.

Chez les échinodermes, le coelome chez les échinodermes adultes est représenté par plusieurs espaces distincts. Il se développe comme une paire de poches latérales et se sépare de l'entéron embryonnaire.

Ces poches représentent la future cavité coelomique et les cellules qui composent la paroi de la poche deviennent le mésoderme. Les deux poches originelles, une de chaque côté, donnent naissance par subdivisions à des vésicules coelomiques, disposées l'une derrière l'autre et appelées respectivement, l'axocèle, l'hydrocèle et le somatocèle.

Ces vésicules coelomiques correspondent au protocèle, mésocèle et métacèle des hémichordés. Le système vasculaire de l'eau provient de l'hydrocèle. Les deux somatocèles se transforment en mésentères intestinaux et l'axocèle gauche se transforme en hydropore.

Points de vue sur la formation Coelom:

Concernant l'origine du cœlome, il existe quatre théories fondamentales qui ont été discutées en détail par Clark (1964).

1. Théorie de l'entérocèle—Proposée pour la première fois par Lankester en 1877, soutenue par Lang (1881), Sedgwick (1884) :

Cette théorie affirme que le coelome peut provenir d'une évagination sous forme de structures en forme de poche et timides dans la paroi de l'arche embryonnaire. Ce type de formation de coelome se produit chez de nombreux animaux entérocèles existants.

Ce concept a été proposé par Lankester en 1877. Sedgwick (1884) a suggéré que les poches gastriques des anthozoaires (Cnidaria) se sont séparées de la cavité gastrique principale (cavité gastro-vasculaire) et se sont transformées en poches cœlomiques (Fig. 17.52).

2. Théorie Gonocoel (HatSchek, 1877, 1878), Bergh (1885), Meyer (1890), Goodrich (1946) :

L'origine du coelome en faveur de la théorie des gonocoels est que les premières cavités coelomiques sont apparues à partir des cavités gonadiques élargies dérivées du mésoderme et que les cavités ont persisté après la libération des gamètes. Par exemple, les gonades des vers plats tricladides sont disposées dans un ordre linéaire et le coelome segmentaire des annélides peut s'être développé à partir de ce tricladide (Fig. 17.53).

3. Théorie du néphrocèle (Lankester, 1874, Snodgrass, 1938) :

La théorie affirme que le coelome provient de la néphridie élargie des vers plats. L'objection principale de cette théorie est que les protonéphridies n'ont pas été enregistrées dans tous les coelomates, même les échinodermes n'ont pas d'organes excréteurs.

4. Théorie de Schizocoel (Clark, 1964) :

La théorie affirme que le coelome pourrait avoir évolué par la division des plaques mésodermiques.

Importance de Coelome:

Le coelome joue un grand rôle dans la vie des animaux.

(i) La teneur en fluide cœlomique facilite le transport en douceur des particules ou des matériaux en solution.

(ii) Coelom offre de la flexibilité au corps et étend l'espace pour le mouvement de l'intestin qui reste suspendu.

(iii) Les gonades qui se développent à partir de l'épithélium coelomique sont logées dans la cavité du coelome. Il en va de même pour les tubules néphridiens, qui relient le coelome à l'extérieur et permettent dans certains cas le passage des ovules et des spermatozoïdes.

(iv) Le coelome rempli de fluide coelomique incompressible agit comme un squelette hydrostatique et aide à la locomotion.


Étapes du développement de l'embryon de poulet

L'un des plus grands miracles de la nature est la transformation de l'œuf en poussin. Un poussin émerge après une brève incubation de trois semaines. La complexité du développement ne peut être appréhendée sans une formation en embryologie.

Lorsque l'œuf est pondu, un certain développement embryonnaire s'est produit et s'arrête généralement jusqu'à ce que des conditions environnementales cellulaires appropriées soient établies pour que l'incubation reprenne. Au début, toutes les cellules se ressemblent, mais au fur et à mesure que l'embryon se développe, des différences cellulaires sont observées. Certaines cellules peuvent devenir des organes vitaux, d'autres une aile ou une jambe.

Peu de temps après le début de l'incubation, une couche de cellules épaissie et pointue devient visible dans l'extrémité caudale ou queue de l'embryon. Cette zone pointue est la strie primitive, et est l'axe longitudinal de l'embryon. À partir de la ligne primitive, la tête et la colonne vertébrale de l'embryon se développent. Un précurseur du tube digestif forme des îlots sanguins qui apparaissent et se développeront plus tard dans le système vasculaire ou sanguin et l'œil commence.

Le deuxième jour d'incubation, les îlots sanguins commencent à se relier et forment un système vasculaire, tandis que le cœur se forme ailleurs. À la 44e heure d'incubation, le cœur et les systèmes vasculaires se rejoignent et le cœur commence à battre. Deux systèmes circulatoires distincts sont mis en place, un système embryonnaire pour l'embryon et un système vitelline s'étendant dans l'œuf.

À la fin du troisième jour d'incubation, le bec commence à se développer et des bourgeons des membres pour les ailes et les pattes sont visibles. La torsion et la flexion se poursuivent jusqu'au quatrième jour. Le corps entier du poussin tourne à 90o et se couche avec son côté gauche sur le jaune. La tête et la queue se rapprochent de sorte que l'embryon forme un "C". La bouche, la langue et les fosses nasales se développent en tant que parties des systèmes digestif et respiratoire. Le cœur continue de grossir même s'il n'a pas été enfermé dans le corps. On le voit battre si l'œuf est ouvert avec précaution. Les autres organes internes continuent à se développer. À la fin du quatrième jour d'incubation, l'embryon possède tous les organes nécessaires à sa survie après l'éclosion, et la plupart des parties de l'embryon peuvent être identifiées. L'embryon de poulet ne peut cependant pas être distingué de celui des mammifères.

L'embryon grandit et se développe rapidement. Au septième jour, des doigts apparaissent sur les ailes et les pieds, le cœur est complètement enfermé dans la cavité thoracique et l'embryon ressemble davantage à un oiseau. Après le dixième jour d'incubation, les plumes et les faisceaux de plumes sont visibles et le bec durcit. Le quatorzième jour, les griffes se forment et l'embryon se met en position d'éclosion. Au bout de vingt jours, le poussin est en position d'éclosion, le bec a percé l'alvéole et la respiration pulmonaire a commencé.

Après 21 jours d'incubation, le poussin commence enfin à s'échapper de sa coquille. Le poussin commence par pousser son bec à travers la chambre à air. L'allantoïde, qui lui a servi de poumons, commence à se dessécher au fur et à mesure que le poussin utilise ses propres poumons. Le poussin continue de pousser sa tête vers l'extérieur. La structure cornée pointue sur le bec supérieur (dent d'œuf) et le muscle à l'arrière du cou aident à couper la coquille. Le poussin se repose, change de position et continue de couper jusqu'à ce que sa tête se libère de la coquille ouverte. Il se dégage alors de la partie inférieure de la coque. Le poussin est épuisé et se repose pendant que les ouvertures du nombril guérissent et que son duvet sèche. Petit à petit, il reprend des forces et marche. L'incubation et l'éclosion sont terminées. Le bonnet corné tombera du bec quelques jours après l'éclosion du poussin.

ÉVÉNEMENTS DANS LE DÉVELOPPEMENT EMBRYONNAIRE

Avant la ponte :
Fertilisation
Division et croissance des cellules vivantes
Ségrégation des cellules en groupes de fonction spéciale (tissus)

Entre la ponte et l'incubation :
Pas de stade de croissance de la vie embryonnaire inactive

Pendant l'incubation :
Premier jour:
16 heures - premier signe de ressemblance avec un embryon de poulet
18 heures - apparition du tube digestif
20 heures - apparition de la colonne vertébrale
21 heures - début du système nerveux
22 heures - début de tête
24 heures - début de l'oeil

Deuxième jour:
25 heures - début de coeur
35 heures - début d'oreille
42 heures - battements de coeur

Troisième jour:
60 heures - début de nez
62 heures - début des jambes
64 heures - début des ailes

Quatrième jour - début de la langue

Cinquième jour - formation des organes reproducteurs et différenciation du sexe

Sixième jour - début de bec

Huitième jour - début des plumes

Dixième jour - début du durcissement du bec

Treizième jour - apparition d'écailles et de griffes

Quatorzième jour - l'embryon se met en position appropriée pour briser la coquille

Seizième jour - écailles, griffes et bec devenant fermes et cornés

Dix-septième jour - le bec se tourne vers la cellule d'air

Dix-neuvième jour - le sac vitellin commence à pénétrer dans la cavité corporelle

Vingtième jour - le sac vitellin complètement enfoncé dans la cavité corporelle L'embryon occupe pratiquement tout l'espace à l'intérieur de l'œuf, à l'exception de la cellule d'air


Archenteron vs Gastrocoele - Biologie

Pourquoi avons-nous besoin de connaissances en embryologie pour étudier l'anatomie ?

Les cellules migrent vers l'intérieur au niveau du blastopore , qui forme ou est proche de l'emplacement de l'anus chez l'adulte
l'ectoderme forme le tube externe de l'embryon
l'endoderme est un tube interne qui forme le tube digestif et tous ses organes dérivés
le mésoderme se situe entre ces deux couches.
À la fin de la gastrulation, l'embryon est à symétrie bilatérale, avec trois couches cellulaires discrètes et des rudiments de la notocorde et du tube neural.

Cette voie de développement du blastopore à l'anus se trouve chez les Chordata, Hemichordata, Echinodermata (étoiles de mer, oursins, concombres de mer, etc.), unissant ces groupes en un groupe monophylétique appelé Deutérostomes. La condition plésiomorphe, trouvée dans les Protostomes, est que le blastopore devienne la bouche.

Gastrulation dans Amphioxus
commence par l'aplatissement de la blastula, la perte du blastocèle et la formation de l'archenteron - la cavité intestinale embryonnaire tapissée d'endoderme. Après aplatissement, deux couches cellulaires peuvent être distinguées - l'ectoderme et l'endoderme.
chordamesoderm , ou le groupe longitudinal de cellules du mésoderme médio-dorsal, se déplace dans le toit de l'archenteron pendant la gastrulation et donne naissance à la notochorde
après aplatissement, le processus de pliage continue pour former davantage l'archenteron ainsi que le blastopore , ou ouverture externe de la gastrula
une différenciation plus poussée des cellules se produit par le processus de bourgeonnement des cellules mésodermiques pour :
- former des poches qui deviendront plus tard des organes
- à l'intérieur de ces poches se trouvent des espaces qui deviendront la cavité corporelle ou le coelome
- la formation de la notocorde se déroule avec la condensation du chordamésoderme dans la notocorde
- le tube neural se forme alors par pincement de l'ectoderme sur la notocorde

*Remarque : Une chose importante à réaliser à ce stade est que dans votre texte, ainsi que dans d'autres diagrammes de développement embryonnaire, les cellules sont codées par couleur pour vous aider à reconnaître leur origine :
l'ectoderme est généralement bleu
endoderme jaune
rose mésoderme
les cellules de la notocorde sont généralement représentées en vert

Gastrulation chez les amphibiens
la gastrulation des amphibiens est légèrement modifiée en raison de la plus grande quantité de jaune contenu dans l'œuf - les cellules du pôle animal sont conservées pour la formation de l'embryon tandis que les cellules remplies de jaune au pôle végétal sont davantage utilisées par l'embryon comme un source d'énergie
la gastrulation est initiée par l'invagination des cellules pour former la lèvre dorsale du blastopore
les mouvements cellulaires provoquent la poussée hors de l'ectoderme et le mouvement vers l'intérieur de l'endoderme et des cellules remplies de jaune
l'archenteron est formé et le blastocèle est lentement rempli de cellules et perdu
les cellules remplies de jaune du pôle végétal restent pendant une courte période pour remplir l'espace entre la lèvre dorsale et ventrale du blastopore, formant ainsi le bouchon vitellin
le mésoderme se différencie progressivement du reste des cellules de la gastrula, tout comme les cellules du chordamésoderme qui vont former la notochorde
la gastrula progresse ensuite vers le stade de formation du tube neural, appelé neurulation

Gastrulation chez les oiseaux
chez les oiseaux, on commence à voir le développement de type méroblastique des embryons, significativement plus de jaune que dans les exemples précédents, et le mouvement des cellules est différent car les cellules se trouvent plus en feuillets qu'en boule.
deux processus conduisent au mouvement cellulaire dans l’embryon de poulet :
- délaminage : feuilles de cellules divisées en couches séparées
- ingression : les cellules individuelles de surface migrent vers l'intérieur de l'embryon
lors du délaminage, deux couches de cellules se forment (l'hypoblaste et l'épiblaste) avec une cavité intermédiaire comparable au blastocèle chez les amphibiens - la séparation de ces deux couches entraîne la formation de deux régions du blastodisque, la zone opaca et la zone pellucide
pendant l'admission, la strie primitive se forme (un épaississement longitudinal des cellules le long du blastoderme des œufs à gros jaune) à travers laquelle les cellules potentielles du chordamésoderme et du mésoderme se déplacent vers l'intérieur - les cellules de l'hypoblaste sont remplacées par des cellules endodermiques
la strie primitive s'allonge le long de la surface du jaune par pénétration - l'embryon s'allonge et occupe une plus grande partie de la zone pellucide
après la gastrulation, le processus de neurulation, ou formation du tube neural et des structures associées, se produit

neurulation
se produit à ou près de la fin de la gastrulation et transforme la gastrula en une neurule en établissant le système nerveux central
l'ectoderme donne naissance à des plis neuraux flanquant un sillon neural le long d'un axe allant du blastopore vers la future tête - ceux-ci s'enfoncent dans le dos de l'embryon et les plis se rejoignent au milieu du dos, formant un tube neural, dont la partie antérieure devient le cerveau et le reste, la moelle épinière
une population de cellules mésodermiques appelées chordamesoderme s'agrège pour former la notochorde - le chordamesoderme induit généralement ( induction embryonnaire ) la formation du tube neural (si le chordamesoderme est retiré expérimentalement, le tube neural ne se formera pas)

Pendant la neurulation
le chordamésoderme qui va former la notocorde induit la formation de la plaque neurale, qui est la première étape de la formation du tube neural.
caractérisé chez la plupart des vertébrés par trois stades
- au stade de la plaque neurale, l'ectoderme sur la face dorsale de l'embryon recouvrant la notocorde s'épaissit pour former la plaque neurale
- au stade du pli neural, l'ectoderme épaissi se replie, laissant une zone surélevée le long du sillon neural. Le pli neural est plus large dans la partie antérieure de l'embryon vertébré, qui est la région qui formera le cerveau.
- au stade du tube neural, les plis neuraux se rapprochent et fusionnent - le sillon neural devient la cavité à l'intérieur du tube neural, qui sera plus tard capable de faire circuler le liquide céphalo-rachidien qui aide au fonctionnement du système nerveux central.

Une caractéristique dérivée trouvée chez les vertébrés est la formation de cellules de la crête neurale
dérivé ectodermique
se développer le long du sommet du tube neural à mesure que les plis neuraux se ferment
la plupart des cellules de la crête neurale se transforment en mésenchyme, un tissu embryonnaire constitué de cellules en forme d'étoile provenant des trois couches germinales
se développer dans le squelette viscéral (c.

Différenciation et dérivation - Organogenèse :
Après la production du tube nerveux, la différenciation des couches germinales se produit rapidement et l'organogenèse commence, dans laquelle les tissus primaires se différencient en organes et tissus spécifiques (Fig. 5.17).
* Endoderme - L'endoderme donne naissance à l'épithélium du tube digestif, à des structures dérivées des poches pharyngées telles que les glandes parathyroïdes, le thymus, la trompe d'Eustache et la cavité de l'oreille moyenne (pas les osselets), et à des structures qui se développent comme une évagination de l'intestin, comme la glande thyroïde, les poumons ou la vessie natatoire, le foie, la vésicule biliaire, le pancréas et la vessie.
* Mésoderme - s'organise en trois régions : l'épimère (mésoderme dorsal), le mésomère (mésoderme intermédiaire) et l'hypomère (mésoderme latéral).
- Epimère : Les somites constituent la majeure partie du mésoderme dorsal et comportent trois régions :

Sources d'énergie au cours du développement et membranes extra-embryonnaires
L'œuf cléidoïque est un trait dérivé important parmi de nombreux vertébrés et a permis aux tétrapodes d'être indépendants de l'eau. En ne considérant que les espèces macro- et mésolécithales, nous savons que les deux contiennent une quantité modérée à grande de jaune que l'embryon peut utiliser comme source d'énergie. Dans l'œuf cléidoïque, l'eau et l'oxygène sont obtenus par diffusion.

Les membranes extra-embryonnaires varient en complexité parmi les vertébrés :
Sac vitellin
- se forme autour du jaune et se connecte à l'embryon via la tige du jaune pour fournir un soutien nutritionnel pendant le développement
- les amniotes et les anamniotes diffèrent par leurs sacs vitellins
les poissons ont un sac vitellin trilaminaire, avec un coelome extra-embryonnaire qui entoure le jaune
les oiseaux et les reptiles possèdent un sac vitellin bilaminaire (constitué uniquement d'endoderme et de mésoderme splanchnique).
Coque membrane/coque
- se forme uniquement dans l'œuf cléidoique des amniotes
- entoure l'embryon, le jaune et les albumines (blanc d'œuf) et le protège
- fournit une surface pour la diffusion de l'oxygène
Allantois - agit comme un compartiment pour le stockage des produits excréteurs azotés tels que l'acide urique, et peut rester après la naissance ou l'éclosion comme la vessie.
Amnion - entoure l'embryon et est rempli de liquide amniotique pour amortir l'embryon
Chorion - entoure l'amnios et le sac vitellin

Modifications du développement des mammifères
l'œuf de mammifère contient un peu de jaune, mais il est microlécithal et isolecithal - nécessite que l'embryon s'implante rapidement afin d'obtenir plus de nutriments de la mère.
clivage précoce dans les embryons de mammifères suivi du stade blastocyste, dont la couche externe des cellules est appelée le trophoblaste. La masse cellulaire interne du blastocyste formera l'embryon.
lors de l'implantation dans l'utérus, se forme le placenta, qui est une structure d'échange physiologique entre le fœtus et la mère. Le placenta est constitué à la fois d'un apport maternel (endomètre de l'utérus) et d'un apport fœtal (trophoblaste), qui serait utilisé comme barrière immunologique empêchant le rejet du fœtus (et de ses chromosomes paternels) par la mère. La forme du placenta varie selon les espèces.
la masse cellulaire interne du blastocyste se développe dans le blastodisque (semblable à celui des poulets). Les premiers stades de développement de l'embryon de mammifère, tels que le stade de la strie primitive, la neurulation et la différenciation de la couche germinale, sont similaires à ceux qui se produisent chez les poulets et les reptiles.
la principale différence trouvée chez les mammifères est le développement du cordon ombilical - contient de l'allantoïde et du sac vitellin ainsi que des structures du système circulatoire qui relient l'embryon au placenta.

Ontogénie et phylogénie
La notion d'un parallèle entre les stades de développement (ontogenèse) et l'histoire évolutive des adultes (phylogénie) est antérieure à l'acceptation de l'évolution. On pensait qu'il existait une Scala Naturae, une "échelle de la nature" ou "échelle de l'être" pour les êtres vivants, qui pouvait être disposée en séquence, comme sur les barreaux d'une échelle. L'échelon le plus élevé était considéré comme une étape de perfection. De même, il a été généralement noté que l'ontogénie d'un individu consistait en une série d'étapes par étapes, et il était naturel de supposer une connexion entre les deux.

Carl Von Baer : a fait un certain nombre de conclusions générales sur le développement appelées lois de Von Baer :

Ernst Haeckel : croyait que les étapes adultes de la chaîne des ancêtres sont répétées pendant l'ontogenèse des descendants, mais que ces étapes sont regroupées dans les premières étapes de l'ontogenèse. Ainsi, l'ontogenèse est une version abrégée de la phylogénie. Haeckel a affirmé que les fentes branchiales des embryons humains étaient littéralement les mêmes structures que les poissons adultes ancestraux, qui ont été repoussées dans l'ontogénie précoce des humains par une accélération du développement des lignées. En d'autres termes, la séquence d'ontogenèses a été condensée et de nouvelles fonctionnalités ont été ajoutées par addition terminale.

Von Baer, ​​en revanche, a fait valoir que les fentes branchiales ne sont pas les stades adultes des ancêtres, mais plutôt un stade commun à l'ontogenèse précoce de tous les vertébrés. C'est-à-dire que l'évolution procède de « l'homogénéité indifférenciée à l'hétérogénéité différenciée », du général au spécifique. La théorie de Von Baer exige seulement que les organismes se différencient, celle de Haeckel nécessite un changement dans le calendrier du développement.

Loi biogénétique
Ces deux idées ont précédé la théorie de l'évolution de Darwin et ont été relues à la lumière de Darwin. Bien que Darwin ait favorisé Von Baer, ​​les idées de Haeckel sont devenues plus acceptées. La théorie de Haeckel est devenue la théorie de la récapitulation ou la loi biogénétique - L'ontogenèse récapitule la phylogénie. C'était une idée séduisante, car elle donnait aux biologistes un moyen de lire la phylogénie directement à partir de l'ontogenèse.

La loi biogénétique a finalement perdu de sa popularité avec l'essor de l'embryologie expérimentale et de la génétique mendélienne. L'embryologie a montré que de nombreuses variétés de changements dans le calendrier du développement étaient possibles et que différentes parties de l'organisme pouvaient différer dans les taux de développement.


Définitions
Acrosome - capuchon au sommet d'une tête de sperme qui contient les enzymes nécessaires pour que le sperme pénètre dans l'ovule

Allantois - membrane extra-embryonnaire qui se développe comme une excroissance de l'intestin postérieur. Sert à la respiration et à l'excrétion des embryons de reptiles et d'oiseaux, contribue au placenta chez les eutheriens et forme la vessie et une partie de l'urètre chez les amniotes adultes

Archenteron - la cavité intestinale embryonnaire tapissée d'endoderme

Blastocèle - une cavité de la blastula qui s'efface pendant la gastrulation et la formation du mésoderme

Blastodisk - le disque de cellules formé lors du clivage qui se trouve au-dessus du jaune des œufs à gros jaune de poissons, de reptiles et d'oiseaux, et sur le dessus du sac vitellin des mammifères

Blastopore - ouverture externe de la gastrula

Blastula - boule de cellules formée lors du clivage, contenant généralement un blastocèle

Chordamesoderm - le groupe longitudinal middorsal de cellules méosdermiques qui se déplace dans le toit de l'archenteron pendant la gastrulation et donne naissance à la notochorde

Délamination - mouvement vers le bas des cellules pour former une nouvelle couche près du jaune

Dermatome - la partie latérale d'un somite qui formera le derme de la peau

Carte du destin - montre les zones cellulaires des blastulas qui donneront ensuite naissance à des types particuliers de cellules

Clivage holoblastique - des sillons de clivage traversent tout l'œuf

Ingression - le mouvement longitudinal des cellules le long de la surface du jaune

Mésenchyme - un tissu embryonnaire constitué de cellules errantes en forme d'étoile qui donne naissance à la plupart des tissus adultes

Myotome - un segment musculaire, généralement appliqué aux segments embryonnaires

Crête néphrique - la région du mésoderme entre le somite et la plaque latérale qui donne naissance aux reins et aux gonades

Crête neurale - une paire de crêtes de cellules ectodermiques qui se développent le long du sommet du tube neural à mesure que les plis neuraux ferment ce caractère dérivé des vertébrés donne naissance à bon nombre de leurs caractéristiques distinctives, notamment le squelette viscéral, les cellules pigmentaires, les neurones sensoriels et postganglionnaires, les cellules dentaires productrices de dentine et certaines écailles osseuses

Tube neural - le tube formé dans l'embryon par la jonction de la paire de plis neuraux le précurseur du cerveau et de la moelle épinière

Neuroectoderme - la partie de l'ectoderme qui donne naissance au tube neural et à la crête neurale.

Strie primitive - un épaississement longitudinal des cellules le long du blastoderme des œufs à gros jaune à travers lequel les cellules potentielles du chordamésoderme et du mésoderme se déplacent vers l'intérieur

Sclérotome - la partie médiane d'un somite qui forme les vertèbres

Somatique - descriptif des structures qui se développent dans la paroi corporelle ou les appendices par opposition à celles du tube intestinal, telles que les muscles somatiques, le squelette somatique

Splanchnic - descriptif des structures qui alimentent l'intestin

Trophoblaste - la couche externe du blastocyste mammifère initie la formation du placenta


Induction embryonnaire : ses types, preuves expérimentales, caractéristiques et mécanisme

Dans les embryons d'amphibiens, les cellules ectodermiques dorsales dans une région mi-longitudinale se différencient pour former une plaque neurale, uniquement lorsque le chorda-mésoderme est en dessous. Le chorda-mésoderme est la couche formée par les cellules d'invagination de la région de la lèvre blastoporale dorsale, qui forment le toit de l'archenteron. Mangold (1927) a sélectionné une petite partie de la lèvre blastoporale dorsale d'une gastrula précoce de Triturus cristatus et l'a greffée à un endroit près de la lèvre latérale du blastopore de la gastrula hôte de T. taeniatus.

Courtoisie d'image : archive.sciencewatch.com/inter/aut/images-aut/2009/09junYamaF1XL.jpg

Les cellules greffées se sont multipliées et se sont propagées à l'intérieur de la gastrula hôte pour former un chorda-mésoderme supplémentaire à cet endroit. Ce chorda-mésoderme a ensuite induit l'ectoderme de la gastrula hôte à former un tube neural supplémentaire.

Les cellules greffées elles-mêmes formaient une notocorde supplémentaire. Au fur et à mesure que la gastrula hôte se développait, elle s'est transformée en un double embryon réuni. L'un des embryons était l'embryon régulier, tandis que le second était l'embryon induit. Ce dernier n'a pas développé une tête complète.

Cette expérience a clairement montré que la lèvre blastoporale dorsale de la blastula avait la capacité d'induire la formation de la plaque neurale dans l'ectoderme de l'hôte. Ce phénomène est appelé induction neurale. D'autres parties d'un embryon peuvent également induire la formation d'autres structures. Cette influence d'une structure dans la formation d'une autre structure est appelée induction embryonnaire.

En fait, tout le développement d'un organisme est dû à une série d'inductions. La structure, qui induit la formation d'une autre structure, est appelée inducteur ou organisateur. La substance chimique émise par un inducteur s'appelle un évacuateur. Le tissu sur lequel agit un évacuateur ou un inducteur est appelé tissu sensible.

Contexte historique de l'induction embryonnaire :

Pour la découverte de l'induction neurale, l'embryologiste allemand Hans Spemann et son étudiante Hilde Mangold (1924) ont beaucoup travaillé et pour son travail Spemann a reçu le prix Nobel en 1935.

Ces deux scientifiques ont effectué certaines transplantations hétéroblastiques entre deux espèces de tritons, à savoir Triturus cristatus et Triturus taeniatus et ont rapporté que la lèvre dorsale de leur gastrula précoce a la capacité d'induction et d'organisation de l'ectoderme neural présumé pour former un tube neural et aussi la capacité d'évocation et d'organisation de l'ectoderme, du mésoderme et de l'endoderme pour former un embryon secondaire complet.

Ils ont appelé la lèvre dorsale du blastopore l'organisateur primaire puisqu'elle était la première dans la séquence des inductions et qu'elle avait la capacité d'organiser le développement d'un deuxième embryon. Plus tard, l'organisateur principal a été signalé comme existant chez de nombreux animaux, par ex. chez les grenouilles (Daloq et Pasteels, 1937) chez les cyclostomes (Yamada, 1938) chez les poissons osseux (Oppenheimer, 1936) chez les oiseaux (Waddington, 1933) et chez le lapin (Waddington, 1934).

L'organisateur primaire et l'induction neurale ont été rapportés chez certains cordés prévertébrés, tels que les ascidies et les amphioxus (Tung, Wu et Tung, 1932). En 1960 et 1963, Curtis a enquêté et signalé que l'organisateur de la gastrula de Xenopus laevis peut être distingué dans le cortex du croissant gris d'un œuf fécondé.

Holtfreter (1945) a expliqué comment une énorme variété de substances totalement non spécifiques - acides organiques, stéroïdes, kaolin, bleu de méthylène, composés sulfhydryle, qui n'avaient rien en commun sauf la propriété d'être toxique pour les cellules sous-ectodermiques - produites dans la neurulation dans explants. Barth et Barth (1968, 69) ont fourni des informations supplémentaires sur la nature chimique de l'induction embryonnaire.

Types d'induction embryonnaire :

Lovtrup (1974) a classé différents types d'induction embryonnaire en deux catégories de base : les inductions endogènes et exogènes.

1. Induction endogène :

Certaines cellules embryonnaires adoptent progressivement un nouveau schéma de diversification à travers les inducteurs qu'elles produisent de manière endogène. Grâce à ces inducteurs, ces cellules subissent soit une auto-transformation, soit une auto-différenciation. Des exemples d'une telle induction ont été rapportés dans des cellules mésenchymateuses du pôle ventral d'échinoïdes et dans des cellules de petite taille chargées de jaunes de la lèvre dorsale de blastopore d'amphibien.

2. Induction exogène :

Lorsqu'un agent externe ou une cellule ou un tissu est introduit dans un embryon, ils exercent leur influence par un processus de modèle de diversification sur les cellules voisines par induction de contact. Ce phénomène est appelé induction exogène. Il peut être homotypique ou hétérotypique selon que l'inducteur provoque respectivement la formation de tissus identiques ou différents (Grobstein, 1964).

Dans l'induction homotypique, une cellule différenciée produit un inducteur. L'inducteur sert non seulement à maintenir l'état de la cellule proprement dite, mais incite également les cellules adjacentes à se différencier en fonction de celui-ci, après avoir franchi les limites cellulaires. Le meilleur exemple de l'induction exogène hétérotypique est la formation d'un axe embryonnaire secondaire par une notocorde présumée implantée chez les amphibiens.

Preuves expérimentales de l'induction :

Spemann et Mangold (1924) ont transplanté par hétéroplasie un morceau de la lèvre dorsale du blastopore d'une gastrula précoce de triton pigmenté, Triturus cristatus et l'ont greffé près de la lèvre ventrale ou latérale du blastopore de la gastrula précoce de triton pigmenté T. taeniatus. La majeure partie du greffon s'est invaginé à l'intérieur et s'est développé en notocorde et en somites et a induit l'ectoderme hôte à former un tube neural, laissant une étroite bande de tissu à la surface.

Avec le développement de l'embryon hôte, un système complet d'organes supplémentaire a été induit au niveau de la zone de placement du greffon. À l'exception de la partie antérieure de la tête, un embryon secondaire presque complet comprenant les organes supplémentaires s'est formé. La partie postérieure de la tête était présente comme indiqué par une paire de rudiments d'oreille.

Étant donné que dans cette expérience, le type de transplantation impliqué était hétéroplasique, il a été constaté que la notocorde de l'embryon secondaire se composait exclusivement de cellules greffées, les somites se composaient en partie de cellules greffées et en partie de cellules hôtes (Fig. 1).

Peu de cellules, qui ne s'invaginaient pas pendant la gastrulation, restaient dans le tube neural. La majeure partie du tube neural, une partie des somites, des tubules rénaux et les rudiments de l'oreille de l'embryon secondaire étaient constitués de cellules hôtes.

Le greffon devient auto-différencié et induit en même temps le tissu hôte adjacent à former la moelle épinière et d'autres structures, y compris les somites et les tubules rénaux. Spemann (1938) a décrit la lèvre dorsale de la gastrula précoce comme un « organisateur principal » du processus gastrulatif.

Cependant, l'organisation de l'embryon secondaire résulte d'une série d'interactions inductives et de changements auto-différentiels dans les tissus de l'hôte et du donneur. Par conséquent, de nos jours, le terme « induction embryonnaire » ou « interactions inductives » est préféré. La partie, qui est la source de l'induction, s'appelle “inductor”.

Caractéristiques de l'organisateur :

L'organisateur a la capacité d'auto-différenciation et d'organisation. Il a également le pouvoir d'induire des changements au sein de la cellule et d'organiser les cellules environnantes, y compris l'induction et l'organisation précoce du tube neural. L'organisateur primaire détermine les principales caractéristiques de l'axiation et de l'organisation de l'embryon vertébré.

L'induction est un processus semblable à un outil, utilisé par ce centre d'activité à travers lequel elle affecte les changements dans les cellules environnantes et, en tant que telle, influence l'organisation et la différenciation. Ces cellules environnantes, modifiées par le processus d'induction, peuvent à leur tour agir comme des centres inducteurs secondaires capables d'organiser des sous-zones spécifiques.

Ainsi, la transformation de la blastula tardive en un état organisé de la gastrula tardive semble dépendre d'un certain nombre d'inductions séparées, toutes intégrées en un tout coordonné par le "stimulus formatif" de l'organisateur primaire situé dans le pré- zone de la plaque cordale des cellules endodermiques-mésodermiques et du matériel chorda-mésodermique adjacent de la gastrula précoce.

Spécificité régionale de l'organisateur :

Des expériences de coloration vitale de Vogt avec des œufs de triton ont montré que le matériau formant successivement la lèvre blastoporale dorsale se déplace vers l'avant à mesure que le toit de l'archenteron. Les greffes prélevées dans cette région sont également capables d'induire un embryon secondaire ou le ventre d'un nouvel hôte, c'est-à-dire que le toit de l'archenteron agit comme un inducteur primaire essentiellement de la même manière que le tissu de la lèvre dorsale proprement dit. Les inductions de l'inducteur neuronal sont spécifiques à une région et la spécificité régionale est imposée à l'organe induit par l'inducteur.

Par conséquent, la capacité inductive de la lèvre blastoporale varie à la fois régionalement et temporellement. La majeure partie du matériel blastoporal dorsal et dorso-latéral est nécessaire pour qu'une greffe induise un embryon secondaire plus ou moins complet. Spemann (1931) a démontré que pendant la gastrulation, la partie antérieure du toit archentérique s'invagine plus tôt sur la lèvre dorsale du blastopore.

La lèvre dorsale du blastopore de la gastrula précoce contient l'organisateur archentérique et deutérocéphalique et la lèvre dorsale du blastopore de la gastrula tardive contient l'organisateur spinocaudal. Les inductions produites par la lèvre dorsale du blastopore prélevée sur la gastrula précoce et tardive diffèrent conformément à l'exception la première tend à produire les organes de la tête et la seconde tend à produire les organes du tronc et de la queue (Fig. 2).

Au fur et à mesure que l'invagination se poursuit et que la lèvre dorsale n'est plus constituée d'un futur endo-mésoderme de la tête mais devient progressivement un futur mésoderme du tronc, elle agit comme un inducteur tronc-queue. La région la plus caudale du toit de l'archenteron, en fait, induit spécifiquement des somites de la queue et probablement d'autres tissus mésodermiques. Le toit de l'archenteron induit une classe de tissus entièrement différente, divers tissus neuronaux et méso-ectodermiques par sa région antérieure et divers tissus mésodermiques par sa région la plus postérieure.

Par conséquent, des différences dans les capacités d'induction spécifiques existent entre la tête et le niveau du tronc du toit de l'archenteron et sont liées à la différenciation régionale du tissu neural en archencéphalique (y compris le cerveau antérieur, l'œil, la fosse nasale), deutérencéphalique (y compris le cerveau postérieur, la vésicule de l'oreille). ) et les composants spinocaudaux. Ainsi, le toit archenteron est constitué d'un inducteur de tête antérieure comprenant un inducteur archencéphalique et un inducteur deutérencéphalique et un inducteur tronc ou spinocaudal.

Induction primaire et croissant gris :

La région de la lèvre dorsale du blastopore au début de la gastrulation remonte au croissant gris de l'œuf d'amphibien fécondé non divisé. Il a été conçu par certains biologistes du développement que le matériau en croissant du cortex de l'œuf a initié la gastrulation et a la capacité d'induction neurale. A.S.G. Curtis (1963) a réalisé une série d'expériences de transplantation de parties du cortex de l'œuf fécondé du crapaud à griffes, Xenopus laevis, au début du clivage.

Dans une expérience, le cortex en croissant gris a été excisé de l'œuf fécondé et il a été observé que la division cellulaire, bien que non perturbée, n'a pas eu lieu (Fig. 3А). Dans une autre expérience, le cortex en croissant gris d'un œuf fécondé non clivé a été excisé et transplanté dans une position ventrale d'un deuxième œuf, de sorte que l'œuf recevant la greffe avait deux croissants gris sur les côtés opposés.

En conséquence, l'œuf s'est clivé pour former une blastula, qui a subi deux mouvements de gastrulation distincts pour produire deux systèmes nerveux primaires distincts, la notocorde et les somites associés (Fig. 3D). Des expériences similaires menées sur le stade à huit cellules ont montré que quelque chose s'était produit pendant le court intervalle – représenté par les trois premiers clivages.

Le cortex en croissant gris du stade à huit cellules conservait encore sa capacité inductive lorsqu'il était greffé à des stades plus jeunes (Fig. 3C). L'élimination du croissant gris à ce stade n'inhibe plus la gastrulation ultérieure et le développement normal, les propriétés manquantes du croissant étant remplacées par les régions corticales adjacentes (Fig. 3B).

Selon Curtis, un changement d'organisation corticale se propage à la surface de l'œuf au cours des deuxième et troisième clivages, à partir du croissant gris lorsque ce changement est achevé, des interactions, probablement de nature biophysique, peuvent avoir lieu entre différentes parties de la cortex.

Mécanisme d'induction neurale:

Le développement de l'ectoderme recouvrant le toit de l'archenteron en tissu neural suggère une action directe sur les cellules ectodermiques, soit par interaction de surface, soit par médiation chimique.

(1) L'une des grandes possibilités est l'interaction de surface des cellules à l'interface inductive. Le contact des deux couches cellulaires peut fournir un dispositif par lequel le motif structurel ou la géométrie ou le comportement des membranes cellulaires ectodermiques est modifié directement par les cellules mésodermiques de la corde sous-jacente.

Ainsi, la configuration spatiale de ces dernières membranes pourrait induire une modification de la configuration spatiale des membranes cellulaires ectodermiques, produisant à son tour à l'intérieur de la cellule des modifications qui déterminent son développement en plaque neurale. Un tel arrangement morphologique pourrait rendre compte d'une transmission rapide et efficace de l'effet inductif.

(2) Une autre possibilité large est une médiation chimique de l'effet inductif. Par conséquent, une ou plusieurs substances chimiques produites et libérées en induisant des cellules mésodermiques de la corde à l'interface archenteron-ectoderme peuvent agir sur les cellules ectodermiques ou y pénétrer pour initier des activités cellulaires conduisant au développement neural. De nombreuses preuves favorisent l'idée d'un échange de matériel entre les cellules et suggèrent également qu'une substance diffusible peut agir comme un stimulus inductif efficace.

Base chimique de l'induction neuronale :

Les résultats de nombreuses études visant à élucider le mécanisme d'induction et à identifier la ou les substances chimiques présumées impliquées n'ont pas donné de bons résultats. Il a été constaté que de nombreux tissus différents, embryonnaires ou adultes, provenant d'une grande variété d'espèces différentes, étaient capables d'induire du tissu nerveux chez les embryons d'amphibiens. De plus, certains tissus étrangers se sont révélés être des inducteurs beaucoup plus puissants après avoir été tués par un traitement thermique ou alcoolique.

Ce fait reste contre le concept d'un « organisateur masqué » universellement présent, libéré dans la région de l'inducteur primaire. Peu d'agents inorganiques comme l'iode et le kaolin, les lésions locales, l'exposition à des solutions salines de pH excessivement élevé ou bas, provoquent une différenciation neuronale dans l'ectoderme. Ces découvertes établissent le grand concept initial d'organisateur embryonnaire chimique-maître de la cytolyse sublétale de Holtfreter. Il a le concept de lésion cellulaire réversible libérant un inducteur neural.

Différentes substances chimiques du croissant gris ou de la lèvre dorsale ou du chordamésoderme sont séparées par différentes méthodes biochimiques pour découvrir la molécule qui provoque l'induction neurale, puis la capacité inductive de chaque molécule a été testée séparément. Peu d'expériences montrent que l'évocateur ou la substance inductrice est une protéine.

Des tentatives exhaustives ont été faites par différents embryologistes pour comprendre le mécanisme réel de l'induction neurale. Certaines théories ont été avancées pour comprendre le mécanisme de l'induction neuronale, dont les plus importantes sont les suivantes :

1. Théorie de la dénaturation des protéines de l'induction neuronale :

Selon Ranzi (1963), l'induction neurale et la formation de notochorde sont liées à la dénaturation des protéines. Le site de formation de la notocorde est le croissant gris des amphibiens, qui est un centre d'activité métabolique élevée. De tels centres de plus grande activité métabolique correspondent à des sites de dénaturation des protéines.

2. Théorie du gradient de l'induction neuronale :

Toivonen (1968) et Yamada (1961) ont déclaré que deux facteurs chimiquement distincts sont impliqués dans l'action de l'inducteur primaire. Parmi ces deux facteurs, l'un est un agent neuralisant et l'autre est un agent mésodermalisant. Ces expériences ont été menées avec de la moelle osseuse et du foie dénaturés comme inducteurs.

La spécificité régionale de l'axe embryonnaire résulte de l'interaction entre deux gradients : le principe neutralisant a sa concentration la plus élevée dans la face dorsale de l'embryon et diminue latéralement, tandis que le principe mésodermalisant est présent sous la forme d'un gradient antéro-postérieur avec son pic dans la région postérieure .

Antérieurement, le principe neutralisant agit seul pour induire les structures du cerveau antérieur, plus postérieurement, le principe mésodermalisant agit avec le neutralisant pour induire les structures du cerveau moyen et du cerveau postérieur, tandis qu'encore plus postérieurement, le niveau de concentration élevé du gradient mésodermique produit des structures spino-caudales. (Fig. 4).

3. Hypothèse à un facteur d'induction neuronale :

Nieuwkoop (1966) utilisant la notocorde vivante comme inducteur, a postulé qu'un seul facteur qui évoque d'abord l'ectoderme pour former le tissu neural et provoque plus tard la transformation de l'ectoderme en une structure plus postérieure et mésodermique (Fig. 5) est impliqué.

Dans une expérience, consistant à combiner un ectoderme gastrulaire isolé avec un morceau de notocorde, puis à retirer le tissu de la notocorde après des durées variables, il a été constaté que seulement 5 minutes d'exposition à l'inducteur provoquaient la transformation d'une partie de l'ectoderme en structures cérébrales et oculaires. .

4. Théorie ionique de l'induction neuronale :

Selon Barth et Barth (1969), le processus réel d'induction peut être initié par la libération d'ions de la forme liée, ce qui représente un changement dans le rapport entre les ions liés et les ions libres dans la cellule de la gastrula précoce. L'induction de cellules nerveuses et pigmentaires dans de petits agrégats d'épiderme potentiel de la gastrula de grenouille dépendait de la concentration des ions sodium.

L'induction normale des cellules nerveuses et pigmentaires par le mésoderme dans de petits explants de la lèvre dorsale et des zones marginales latérales de la gastrula précoce dépend de la concentration externe de sodium. Ainsi, l'induction embryonnaire normale dépend d'une source endogène d'ions et qu'une libération intracellulaire de ces ions se produit pendant la gastrulation tardive.

Base génique de l'induction neurale :

Il existe des preuves que les tissus constitutifs de l'inducteur neural se différencient avant les cellules ectodermiques. Au cours de ce processus, le taux de transcription de l'ARNm et d'activation différentielle des gènes est multiplié par plusieurs, tandis que la différenciation des cellules ectodermiques n'est établie qu'après la mi-gastrulation.

Selon les expériences menées par Tiedemann (1968), après 2 à 7 jours de culture de la lèvre dorsale du blastopore de jeune Triturus gastrula avec l'ectoderme adjacent dans un milieu contenant des quantités suffisantes d'actinomycine-D pour inhiber la synthèse d'ARN, l'induction n'a pas pu avoir lieu, mais une certaine différenciation du muscle et de la notocorde s'est produite. Il montre que l'ARNm par transcription à partir de l'ADN était nécessaire, ce qui nécessite également la présence d'actinomycine-D. Par conséquent, aucune induction neurale n'a pu être détectée dans cette expérience.

Temps d'induction neuronale :

L'induction neurale se produit au moment où le matériau du chordamésoderme se déplace de la lèvre dorsale du blastopore vers l'intérieur et vers l'avant (Saxen et Toivonen 1962). Les stimuli inductifs présentent un gradient de temps, qui peut être crucial en ce qui concerne les événements d'action et de réaction.

Induction embryonnaire dans différents cordés :

Bien que l'induction neurale ait été découverte pour la première fois chez les amphibiens urodèles, il a été constaté que la lèvre dorsale du blastopore et le toit de l'archenteron d'autres vertébrés ont la même fonction. Le chordamésoderme chez tous les vertébrés induit le système nerveux et les organes des sens. L'inducteur neuronal a été étudié dans les accords suivants :

(1) Chez les cyclostomes, en particulier chez les lamproies, la propriété de l'induction neurale réside dans les cellules mésodermiques présumées de la corde de la lèvre dorsale du blastopore.

Avant les cyclostomes, chez les Ascidies, différents blastomères du stade huit cellules ont les destins présumés suivants : (i) les deux blastomères du pôle animal antérieur produisent l'épiderme de la tête, les palpes et le cerveau avec ses deux structures sensorielles pigmentées, (ii) deux blastomères du pôle animal postérieur produisent l'épiderme, (iii) deux blastomères végétaux antérieurs produisent la notocorde, la moelle épinière et une partie de l'intestin (iv) deux cellules végétales postérieures produisent le mésenchyme, les muscles et une partie de l'intestin.

A partir de ces expériences, Raverberi (1960) a conclu que la formation et la différenciation du cerveau par deux blastomères animaux antérieurs dépendent de l'induction de deux blastomères végétaux antérieurs, qui agissent comme des inducteurs neuronaux. Il a en outre été conclu que les deux blastomères végétaux antérieurs ont donné naissance à divers tissus, à savoir l'endoderme, la notocorde et la moelle épinière.

(2) Wu et Tung (1962) ont prouvé l'existence de l'organisateur primaire et de l'induction neurale chez Amphioxus. Ils ont transplanté des morceaux de tissus de la surface interne de la lèvre dorsale du blastopore d'un début de gastrula d'Amphioxus dans le blastocèle d'un autre embryon au même stade (Fig. 6) et ont observé que l'embryon secondaire se développait dans la région ventrale de l'hôte avec un notocorde et mésoderme produits par le greffon et le tube neural à partir du tissu hôte.

Ainsi, le tissu cordal d'Amphioxus gastrula possède le pouvoir d'induction neurale, tandis que les tissus mésodermiques et endodermiques ont peu un tel pouvoir inductif.

(3) Chez les poissons osseux, l'induction d'embryons secondaires bien développés a été produite en transplantant le bord postérieur du blastodisque qui correspond à la lèvre dorsale du blastopore, dans le blastocèle d'un autre embryon (Fig. 7) ou en transplantant le chordamésoderme et ectoderme. Des inductions neurales ont également été obtenues en transplantant la lèvre dorsale du blastopore chez l'esturgeon.

(4) Chez les grenouilles, l'induction de l'embryon secondaire peut être produite par la lèvre dorsale du blastopore transplantée dans le blastocèle d'une jeune gastrula, à peu près de la même manière que chez les tritons et les salamandres.

(5) Chez les reptiles, archenteron a la même activité inductrice que chez les autres vertébrés, mais il n'y a aucune preuve expérimentale de l'apparition d'inducteur neural.

(6) Chez les oiseaux, l'existence de l'organisateur principal a été établie par Waddington et ses collaborateurs. La moitié antérieure de la ligne primitive était la partie inductrice semblable aux lèvres du blastopore chez les amphibiens. Dans l'expérience, des blastodermes entiers ont été retirés de l'œuf au début de la gastrulation et cultivés in vitro sur le caillot de plasma sanguin.

A partir d'un autre embryon, des parties de la strie primitive ont ensuite été insérées entre épiblaste et hypoblaste, inductions d'embryons secondaires obtenues. La strie primitive a été trouvée dépendante de l'hypoblaste sous-jacent pour sa formation (Fig. 8).

(7) Une induction neurale réussie a été réalisée dans un embryon de lapin en cultivant le blastodisque précoce sur un caillot de plasma et en implantant la séquence primitive du poussin comme inducteur. Les tissus de la gastrula des mammifères ont été trouvés compétents pour l'induction neurale. L'extrémité antérieure d'un embryon de lapin, avec deux paires de somites, induit une plaque neurale dans un embryon de poulet lorsqu'il est placé sous un blastoderme de poulet.

Autres types d'inductions embryonnaires :

Parallèlement à la croissance de la gastrulation, divers systèmes organiques de l'embryon commencent à se différencier et acquièrent le pouvoir d'induire la différenciation de structures ou d'organes formés plus tard tels que les yeux, les oreilles, les membres et les poumons, etc. Ces organes développent des propriétés d'organisation et deviennent la source de induction.

Par conséquent, cette série d'organisateurs peut être appelée organisateurs secondaires, tertiaires et quaternaires. Le développement progressif des organes embryonnaires dépend d'une induction séquentielle. Un tissu embryonnaire interagit avec le tissu adjacent et induit son développement et ce processus se poursuit en séquence.

Le mésoderme Chorda, l'organisateur principal, induit la formation du cerveau antérieur et de la zone optique dans la partie antérieure de l'embryon. La zone optique s'évagine formant la vésicule optique. Par invagination, il se transforme en une structure en forme de coupe à double paroi, la coupe optique qui agit comme un organisateur secondaire pour induire la formation d'un organisateur tertiaire pour former la cornée.

La couche de mésenchyme laissée devant la chambre antérieure de l'œil se combine avec l'ectoderme somatique sus-jacent (épiderme) et forme la cornée, la choroïde et la sclérotique (Fig. 9). Ainsi, tout le processus de développement semble n'être qu'une cause d'induction et d'interaction. Nombre d'inductions sont secondaires ou tertiaires telles que le sillon nasal, la vésicule optique, le cristallin, la cornée et ainsi de suite impliquent des réactions ectodermiques.


Gastrulation chez le poussin : sa signification et son mécanisme (1252 Word) | La biologie

Chez le poussin, le processus de gastrulation est plus long et fortement modifié que celui de la grenouille et de l'Amphioxus. Il est déjà commencé lorsque l'œuf de poussin est pondu et se termine bien dans le deuxième jour de cubation. La principale caractéristique de la gastrulation aviaire est la séquence primitive.

La strie est d'abord visible sous la forme d'un épaississement de la feuille cellulaire à l'extrémité postérieure centrale de la zone pellucide. Cet épaississement est causé par la migration des cellules de la région latérale de l'épiblaste postérieur vers le centre. Au fur et à mesure que l'épaississement se rétrécit, il se déplace vers l'avant et se resserre pour former la ligne primitive définitive. Cette ligne s'allonge de 60 à 75 pour cent de la longueur de la zone pellucide et marque l'axe antéro-postérieur de l'embryon.

Image reproduite avec l'aimable autorisation de : Faculty.cascadia.edu/ccollin/zoology%20docs/pictures/gastrulation.jpg

Au fur et à mesure que les cellules convergent pour former la strie primitive, une dépression se forme dans la strie, le sillon primitif, à travers ce sillon primitif, les cellules migrantes passent dans le blastocèle.

À l'extrémité antérieure de la ligne primitive se trouve un épaississement régional de cellules appelé nœud primitif ou nœud de Hensen.

Il y a une dépression en forme d'entonnoir au centre du nœud à travers laquelle les cellules peuvent passer dans le blastocèle. Dès que la ligne primitive est formée, les cellules du blastoderme commencent à migrer sur les lèvres de la ligne primitive et dans le blastocèle (Fig. 17).

Les cellules qui migrent à travers le nœud de Henson descendent dans le blastocèle et migrent vers l'avant pour former le mésoderme de la tête et la notocorde, et les cellules qui traversent la partie latérale de la ligne primitive forment la majorité des tissus endodermiques et mésodermiques. Les cellules qui pénètrent à l'intérieur de l'embryon aviaire forment un mésenchyme non connecté. De plus, aucun archenteron véritable ne se forme dans la gastrula aviaire.

Au fur et à mesure que les cellules entrent dans la ligne primitive, la ligne s'allonge vers la future région de la tête. Dans le même temps, les cellules hypoblastiques secondaires continuent de migrer en avant depuis le bord postérieur du blastoderme. Les premières cellules à migrer à travers la séquence primitive sont celles destinées à devenir l'intestin antérieur.

À l'intérieur du blastocèle, ces cellules migrent vers l'avant et finissent par déplacer les cellules hypoblastiques dans la partie antérieure de l'embryon. Les cellules suivantes entrant dans le blastocèle par le nœud de Hensen se déplacent également en avant, mais elles ne se déplacent pas aussi ventralement que les cellules endodermiques présumées.

Ces cellules restent entre l'endoderme et l'épiblaste pour former le mésoderme de la tête et les cellules du mésoderme de la corde (notochordale). Ces cellules à pénétration précoce se sont toutes déplacées vers l'avant, poussant vers le haut la région médiane antérieure de l'épiblaste pour former le processus de la tête.

Pendant ce temps, les cellules continuent de migrer vers l'intérieur à travers la séquence primitive. Lorsqu'elles pénètrent dans le blastocèle, ces cellules se séparent en deux flux. Un flux se déplace plus profondément et rejoint l'hypoblaste le long de sa ligne médiane, déplaçant les cellules de l'hypoblaste sur les côtés.

Ces cellules en mouvement profond donnent naissance à tous les organes endodermiques de l'embryon ainsi qu'à la plupart des membranes extra-embryonnaires. Le deuxième flux migratoire s'étend dans tout le blastocèle sous forme d'une feuille lâche, à peu près à mi-chemin entre l'hypoblaste et l'épiblaste.

Cette feuille donne naissance à des portions mésodermiques de l'embryon et à des membranes extra-embryonnaires. À 22 heures d'incubation, la plupart des cellules endodermiques présumées se trouvent à l'intérieur de l'embryon, bien que les cellules mésodermiques présumées continuent de migrer vers l'intérieur pendant plus longtemps.

Maintenant, la deuxième phase de la gastrulation commence. Alors que l'ingression mésodermique se poursuit, la strie primitive commence à régresser (disparition de la strie primitive) déplaçant le nœud de Hensen du centre de la zone pellucide vers une position plus postérieure.

Au fur et à mesure que le nœud se déplace vers l'arrière, la partie restante (postérieure) de la notocorde est déposée. Enfin, le nœud régresse vers sa position la plus postérieure, formant finalement la région anale à la manière d'un véritable deutérostome. À ce stade, l'épiblaste est entièrement formé de cellules ectodermiques présumées.

En conséquence de ce processus de gastrulation en deux étapes, les embryons aviaires (et mammifères) présentent un gradient antéro-postérieur distinct de maturité développementale. Alors que les parties postérieures de l'embryon subissent une gastrulation, les cellules de l'extrémité antérieure commencent déjà à former des organes. Pendant les quelques jours suivants, l'extrémité antérieure de l'embryon est plus avancée dans son développement que l'extrémité postérieure.

Alors que les cellules mésodermiques et endodermiques présumées se déplacent vers l'intérieur, les précurseurs ectodermiques entourent le jaune d'épibole. L'enclos du vitellus par l'ectoderme prend plus de 4 jours et implique la production continue de nouveau matériel cellulaire aux dépens du vitellus et la migration des cellules ectodermiques présumées le long de la face inférieure de l'enveloppe vitelline.

Ainsi, alors que la gastrulation aviaire touche à sa fin, l'ectoderme a entouré le jaune, l'endoderme a remplacé l'hypoblaste et le mésoderme s'est positionné entre ces deux régions. Ainsi, la gastrula de poussin entièrement formée se compose de ces couches germinales - ectoderme, cordage-mésoderme et endoderme.

Signification de la séquence primitive :

La ligne primitive avec son nœud de Hensen est analogue au blastopore et à ses lèvres dorsales de gastrula d'amphibien. La seule différence est que le blastopore aviaire est allongé alors que le blastopore amphibien est circulaire. Certaines homologies sont les suivantes :

(1) La fosse primitive représente l'ouverture dorsale du blastopore (canal neurentérique).

(2) Le nœud primitif correspond à la lèvre dorsale du blastopore (futur bourgeon caudal).

(3) Le sillon et les plis primitifs sont comparables aux lèvres latérales opposées du blastopore.

(4) L'extrémité postérieure de la ligne primitive peut être comparée à la région ventrale du blastopore (future ouverture anale).

(5) Les premières cellules qui migrent à travers la ligne primitive sont celles destinées à devenir l'intestin antérieur. Cette situation est à nouveau similaire à celle des amphibiens.

Mécanisme de la gastrulation aviaire :

Rôle de l'hypoblaste :

Auparavant, on croyait que l'hypoblaste influençait l'orientation de l'axe embryonnaire du poulet (Waddington, 1932). Plus tard, en 1972, Rosenquist a suggéré que l'hypoblaste ne contribue à aucune cellule du poussin adulte. Mais récemment, des embryologistes ont montré que l'hypoblaste dirige la formation et. la directionnalité de la ligne primitive.

Mouvement cellulaire au sein des blastocèles :

Comme la gastrulation des amphibiens, les cellules de l'embryon de poulet passant à travers la lèvre du blastopore contractent leurs extrémités apicales pour devenir des cellules en bouteille. Les polysaccharides extracellulaires comme l'acide hyaluronique peuvent jouer un rôle important dans cette migration. Ils facilitent la migration des cellules individuelles en recouvrant les surfaces des cellules entrantes. En raison de ce revêtement, les cellules restent séparées les unes des autres. L'acide hyaluronique peut être capable de maintenir les cellules séparées par sa capacité à se dilater dans l'eau.

De plus, le mouvement cellulaire de ces cellules est corrélé à la présence d'un réseau de fibronectine dans la lame basale extracellulaire des cellules épiblastiques. Cette couche riche en fibronectine apparaît sur la surface inférieure de la couche supérieure peu avant la formation de la ligne primitive et disparaît dans la région de la ligne. Cependant, il n'y a aucune preuve claire que cette fibronectine est essentielle pour les mouvements cellulaires dirigés.

Epibole de l'ectoderme :

Les cellules opaca de la zone marginale sont les agents de l'épibolie ectodermique car (i) le blastoderme ne se propage que lorsque les marges s'étendent, (ii) lorsque les cellules marginales sont coupées du reste du blastoderme, elles continuent à se développer seules.

Ainsi, il apparaît que les cellules précurseurs ectodermiques sont déplacées par les cellules en migration active de la zone opaca. Il existe également une relation spécifique entre les membranes cellulaires des cellules marginales et la surface inférieure de la membrane vitelline.


Résumé

Cette étude examine les mécanismes de réarrangement des cellules épithéliales au cours de l'allongement de l'archentéron dans l'embryon d'oursin en utilisant la microscopie électronique à balayage, la vidéomicroscopie à contraste d'interférence différentielle, le marquage cellulaire et des clones chimériques marqués par fluorescence. L'élongation d'archenteron implique deux processus principaux : changements de position locaux de cellules dans la paroi de l'archenteron et motilité polarisée des cellules au fur et à mesure qu'elles se réorganisent. Clones chimériques marqués par fluorescence introduits dans l'archenteron de Lytechinus pictus ont initialement 4 à 5 cellules de large à la fin de la gastrulation, les clones s'allongent et se rétrécissent, de sorte qu'ils ont une cellule de large dans la région la plus étroite de l'archenteron. L'étendue du mélange clonal indique que les cellules de l'archenteron changent leurs positions relatives de seulement 1 à 2 diamètres cellulaires pendant le réarrangement cellulaire. Les cellules du blastopore se réarrangent de manière concomitante avec les cellules de l'archenteron, entraînant une diminution de 35 % du diamètre du blastopore. Les cellules de l'endoderme subissent des changements de forme et de motilité polarisés et spécifiques au stade lorsqu'elles se réorganisent : (1) elles s'aplatissent nettement le long de leur axe apico-basal tout au long de l'élongation de l'archentéron (2) juste avant le début du réarrangement cellulaire, les surfaces basales de toutes les cellules dans l'archentéron s'étend de longues protubérances lamellipodiales polarisées le long de l'axe d'extension de l'archentéron (3) lorsque le réarrangement cellulaire commence, les surfaces basales s'arrondissent et les cellules deviennent isodiamétriques (4) au stade 3 4 gastrula les cellules s'étirent le long de l'animal- axe végétal, apparemment dû à la traction filopodiale, et enfin (5) ils continuent à se réarranger, revenant à une forme moins allongée à la fin de la gastrulation. Observation directe de la gastrulation dans le cidaroïde Eucidaris tribuloides indique que dans cette espèce, le réarrangement cellulaire est accompli par intercalation circonférentielle progressive des cellules sans filopodes dirigés vers le haut. Cette intercalation s'accompagne d'une activité corticale explosive, apparemment stochastique, aux frontières entre les cellules, suggérant qu'en plus de tout réarrangement cellulaire pouvant être généré par la tension filopodiale, une telle activité est une composante importante du processus de réarrangement actif.

Ce travail a été soutenu par une bourse prédoctorale NSF, la bourse postdoctorale NIH GM122780 et une bourse Duke University Hargitt à l'auteur, et par les subventions NIH HD18979 à R. Keller, HD14503 à F. Wilt et HD14483 à D. McClay.


Différence entre Blastula et Gastrula

le différence principale entre Blastula et Gastrula est que Blastula est une boule creuse de cellules, tandis que Gastrula est une structure creuse en forme de coupe avec trois couches distinctes de cellules pendant le développement de l'embryon.

Blastula contre Gastrula

Au cours du processus de blastulation, la blastula résulte de la morula. Gastrula formé à la suite de blastula pendant le processus de gastrulation. La blastula est une structure creuse monocouche. Gastrula est une structure creuse à trois couches. La blastula est comme une boule creuse de cellules, c'est pourquoi les cellules qu'elle contient ne montrent aucun mouvement pendant sa formation. Les cellules de gastrula ont montré une migration au cours du processus de gastrulation lorsque la gastrula a formé une blastula. Blastula se compose de 128 cellules. Gastrula contient plus de cellules comparativement.

Dans la blastula, des cellules non différenciées sont présentes. Dans la gastrula, des cellules différenciées sont présentes. La blastula recouverte de zona pellucida (couche épaisse pour protéger l'ovule). Gastrula non recouverte de zone pellucide. Dans la blastula, le blastocèle est présent. Dans la gastrula, des blastopores sont présents. La blastula est un stade embryonnaire précoce. La gastrula est un stade mature du développement embryonnaire suivi de la blastula.

Dans la blastula, cavité remplie de liquide. Dans gastrula, la cavité remplie de blastopores. Blastula comprend une masse cellulaire interne, ce qui conduit à l'explosion de l'embryon dans la couche la plus externe, c'est-à-dire le trophoblaste, qui donne naissance au placenta. La gastrula est un mouvement massif de cellules pour former différentes couches.

Chez les mammifères, la blastula est également appelée « blastocyste ». Dans la gastrula, trois couches germinales interagissent pour former des organes appelés « organogenèse ». Blastula a une seule couche externe de cellules appelée «blastoderme». Gastrula a principalement trois couches germinales. La blastula est constituée de six à trente-deux structures creuses cellulaires - une gastrula formée par la migration vers l'intérieur des cellules de la blastula. La blastula se forme lorsque l'embryon n'est pas mature. Gastrula conduit en outre à la formation d'un embryon mature.

Tableau de comparaison

BlastulaGastrula
1ère étape après la fécondationLa scène juste après la blastula
Couches présentes
Zone pellucideEctoderme, mésoderme et endoderme
Étapes de l'embryogenèse
ExplosionGastrulation
La division cellulaire
Pas de division cellulaireLes cellules commencent la différenciation
blastocèle
Couvre principalement le volumeCouvre moins de volume
Numéro de téléphone
Moins de cellules sont présentesPlus de cellules sont présentes
Différenciation cellulaire
IndifférenciéDifférencié
Résultats de
ZygoteBlastula

Qu'est-ce que Blastula ?

La blastula est un stade précoce de développement de l'embryon humain. L'ovule d'un animal se féconde avec du sperme au niveau de la trompe de Fallope dans le corps de la mère. Après le processus de fécondation, un zygote se forme, ce qui entraîne une série de divisions cellulaires via le processus de mitose après avoir dépassé l'utérus de la mère. Le processus connu sous le nom de clivage a déclenché la division et produit une boule de masse solide de cellules est connu sous le nom de « morula ». Cellules présentes dans la morula appelées « blastomères ». Dans les cellules blastula, commencez à compacter et déplacez-vous vers le bord de la cellule, laissant un espace rempli de liquide au centre. Cette cavité remplie de liquide entourant le blastoderme est connue sous le nom de « blastocèle ». Une couche unicellulaire externe est présente pour couvrir le blastocèle, appelée «blastoderme».

Chez les mammifères, la blastula se développe en « blastocyste ». Il contient une masse interne, qui est légèrement différente d'une blastula. La couche sphérique du blastocyste appelée « trophoblaste ». Cette couche de trophoblaste se développe ensuite dans le placenta, qui nourrit l'embryon en croissance. La masse cellulaire interne du blastocèle est également appelée « embryoblaste ». Un embryoblaste conduit à différents types de cellules. Il contribue en outre à l'organogenèse.

Lorsque le blastocyste atteint l'utérus, il pénètre dans la paroi de l'endomètre de l'utérus pour le processus appelé « implantation ». Au cours du processus d'implantation, le blastocyste éclot à l'intérieur de la zone pellucide (une épaisse membrane transparente entoure l'ovule pour la protéger). Le processus d'implantation s'est terminé en 11-12 jours après la fécondation. Ovum complètement implanté dans la paroi de l'endomètre de l'utérus, puis la blastula est appelée embryon.

Qu'est-ce que la Gastrula ?

Le stade gastrula est le stade auquel l'embryon précoce développe trois couches germinales, ce qui contribue davantage à l'organogenèse. La plupart des cellules présentes à la surface se déplacent vers un nouvel emplacement intérieur. Ce mouvement vers l'intérieur des cellules est connu sous le nom d'« invagination ». Ces cellules invaginées se colocalisent du côté opposé et convertissent l'embryon en une cupule à double paroi. Gastrula donne naissance à la paroi de l'endoderme et à la paroi du mésoderme. La coupe extérieure demeure, ce qui donne naissance à l'ectoderme.

La couche la plus externe, connue sous le nom d'ectoderme, se différencie en cerveau, peau, moelle épinière et nerfs de l'embryon. Le mésoderme de la couche intermédiaire forme les muscles, le cartilage, les organes reproducteurs, les os, le tissu conjonctif, le derme cutané et la dentine dentaire. La couche la plus interne qui est l'ectoderme se différencie dans l'intestin primitif des organismes
dans les organismes diploblastiques, deux couches germinales primaires se sont formées, à savoir l'ectoderme et l'endoderme. Dans les organismes triploblastiques, trois couches germinales endoderme, ectoderme et mésoderme s'organisent au bon endroit dans un embryon pendant le processus de gastrulation.

Le blastocèle présent dans la blastula est éliminé par l'invagination des cellules. Cependant, dans la coupe creuse, une nouvelle cavité se développe, connue sous le nom d'« archenteron ». Archenteron forme un futur intestin d'animaux rudimentaires. Ouverture dans l'archenteron appelée "blastopore".

Après le processus de gastrulation, une division cellulaire rapide commence dans l'embryon et divers organes pour se former par un processus appelé «organogenèse». Blastula se transforme en gastrula ce processus connu sous le nom de « gastrulation ». Ce processus se déroule alors par organogenèse. Trois couches germinales produites dans la gastrula donnent alors finalement naissance à des organes dans l'embryon mature.

Différences clés

  1. Dans les cellules blastula, ne bougez pas, alors que, dans la gastrulation, les masses cellulaires se déplacent par des mouvements morphogénétiques.
  2. La blastula résulte de la blastulation, tandis que la gastrula résulte de la gastrulation.
  3. Dans la blastula, les couches germinales ne sont pas présentes sur le revers de la gastrula, trois couches germinales sont présentes.
  4. La blastula est un stade précoce du développement d'un embryon, bien que la gastrula soit un embryon au stade après la blastula.
  5. Blastula a plutôt moins de cellules, gastrula a comparativement plus de cellules.
  6. Blastula montre une division lente, tandis que gastrula montre une division rapide des cellules.
  7. Le stade blastula a des cellules indifférenciées. Cependant, la gastrula contient des cellules différenciées.
  8. La blastula est de forme sphérique, tandis que la gastrula est en forme de coupe.
  9. Le mouvement cellulaire morphogénétique n'est pas observé dans la blastula, tandis que les mouvements cellulaires morphogénétiques sont observés dans la gastrula.
  10. Dans la blastula, le blastocèle s'est étendu. Cependant, dans la gastrula, le blastocèle se rétrécit.
  11. Blastula se compose d'une structure monocouche, tandis que gastrula se compose d'une couche externe et d'une couche interne.
  12. La blastula est également connue sous le nom de pré-embryon de l'autre côté, gastrula, également connue sous le nom d'embryon mature.
  13. Blastula possède une zone pellucide, tandis que gastrula ne possède pas de zone pellucide.
  14. La blastula est le premier stade du développement embryonnaire d'un autre côté, la gastrula est le stade mature du développement embryonnaire.
  15. La blastula se forme après le zygote, tandis que la migration vers l'intérieur des cellules différenciées forme la gastrula.

Conclusion

Il a conclu que Blastula appelé pré-embryon et Gastrula est un embryon mature.

Janet Blanc

Janet White est rédactrice et blogueuse pour Difference Wiki depuis 2015. Elle est titulaire d'une maîtrise en journalisme scientifique et médical de l'Université de Boston. En dehors du travail, elle aime faire de l'exercice, lire et passer du temps avec ses amis et sa famille. Connectez-vous avec elle sur Twitter @Janet__White


Développement de membranes fœtales chez Amphioxus et Frog | La biologie

Dans le développement embryonnaire des vertébrés, seule une partie de l'œuf ou de la masse de cellules de clivage forme l'embryon proprement dit, tandis que d'autres parties situées en dehors du territoire embryonnaire se développent en régions extra-embryonnaires, appelées membranes embryonnaires ou fœtales.

Les membranes embryonnaires sont des organes auxiliaires, qui sont apparus en partie pour la protection de l'embryon, et plus spécialement pour pourvoir à sa nutrition, sa respiration et son excrétion jusqu'à ce que l'existence indépendante soit atteinte.

Image courtoisie : euclidlibrary.org/blue-poison-dart-frog.jpg?sfvrsn=0

Développement de membranes fœtales chez Amphioxus:

Après l'apparition du blastocèle, l'embryon se compose d'une structure en forme de boule creuse ayant une couche périphérique de cellules entourant une cavité placée au centre. Les cellules de cette couche sont de forme et de taille différentes.

Les cellules de la région polaire animale sont plus petites et les cellules de la région polaire végétale inférieure sont plus grandes. Les grandes cellules ventrales deviennent colonnaires et cunéiformes. Ils s'allongent et s'élargissent sur leur surface interne. La région végétale pousse vers le pôle animal et forme une structure en forme de coupe, qui oblitère la cavité, le blastocèle.

Ce futur archenteron communique avec l'extérieur par le blastopore. L'ectoderme extérieur et l'endoderme intérieur sont continus au niveau des lèvres du blastopore. L'embryon se développe rapidement jusqu'au stade larvaire libre et reste immergé dans l'eau.

Ils n'ont besoin d'aucune aide auxiliaire autre qu'un approvisionnement en jaune, suffisant pour durer jusqu'à ce qu'une vie indépendante puisse être menée. Le jaune est contenu dans des cellules endodermiques plus grandes qui constituent le plancher épais de l'intestin.

Développement de membranes fœtales chez la grenouille:

Le bouchon vitellin entièrement formé est situé sur la face ventrale de la gastrula et vient ensuite se trouver dans une position qui sera la face postérieure de l'embryon. Cela se produit en raison de la rotation de l'ensemble de la gastrula à l'intérieur de la membrane vitelline.

Le bord du blastopore se déplace sur la surface de la région végétale, cette dernière est attirée à l'intérieur et tourne, de sorte qu'après la fin de la gastrulation, elle vient se situer dans la partie ventrale de la cavité nouvellement formée intérieurement, l'archenteron.

La formation de trois couches germinales, ectoderme mésoderme et endoderme a lieu :

Ectoderme :

A la fin de la gastrulation, les mouvements épiboliques se traduisent par une immense augmentation de l'ectoderme présumé et du système nerveux à la surface de l'embryon. Les cellules formant le mésoderme et l'endoderme se déplacent vers l'intérieur.

L'expansion de l'ectoderme est un processus actif et ces cellules se développent dans toutes les directions mais les cellules formant le système nerveux ne se développent que dans le sens longitudinal, c'est-à-dire vers le blastopore. Toute la zone du système nerveux change ainsi de forme et devient ovale.

Notochorde :

La notochorde roule sur la lèvre dorsale du blastopore vers l'intérieur et s'étire le long de la face dorsale de l'archenteron formant la bande médio-dorsale du toit de l'archenteron.

Mésoderme :

La plaque préchordale, située juste en dessous de la notocorde présumée, est le premier mésoderme à s'invaginer. La majeure partie du mésoderme s'invagine à l'intérieur en roulant sur les lèvres latérales et ventrales du blastopore.

Le mésoderme pénètre à l'intérieur entre l'ectoderme externe et l'endoderme interne. La notochorde et le matériel mésodermique à ce stade se présentent sous la forme d'une feuille épithéliale continue connue sous le nom de manteau chorda-mésodermique.

Trois points de vue différents ont été proposés concernant la formation du mésoderme chez la grenouille :

Rugh (1951) et d'autres ont proposé que l'endoderme et le chorda-mésoderme entourent l'archenteron. Le schéma suivant est observé pour la formation de la couche : l'ectoderme et l'endoderme sont continus au niveau des lèvres blastoporales et l'ectoderme et l'endoderme tout le long du blastopore forment un angle. Cet angle fait face au blastocèle et est circulaire.

Les cellules proches de cet angle prolifèrent (elles se multiplient et s'étendent vers l'intérieur entre l'ectoderme et l'endoderme) et se propagent pour remplir l'espace blastocélique. C'est la nouvelle couche du mésoderme. Comme le blastopore est circulaire, le mésoderme est formé comme une couche circulaire. Sa longueur dorsale moyenne est maintenant appelée chorda-mésoderme. Ici, le chorda-mésoderme ne forme pas le toit de l'archenteron, mais reste au-dessus de l'endoderme. L'endoderme ne se divise pas pour former le mésoderme.

2. Deuxième théorie :

Selon McEwen (1957) et d'autres, l'hypoblaste latéral se divise en deux couches : les couches externe et interne. La couche externe est le mésoderme latéral et la couche interne est l'endoderme latéral. Cette division n'a pas lieu à la lèvre du blastopore, où l'épiblaste et l'hypoblaste sont continus. Dorsalement le toit de l'archenteron, qui est une épaisse bande multicellulaire d'hypoblaste, les cellules se divisent un peu plus tard.

Cette bande se divise en un mésoderme supérieur et un endoderme inférieur avec un espace entre les deux. Pendant ce temps, la scission de l'hypoblaste latéral se poursuit dorsalement pour rejoindre l'espace entre le toit fendu de l'archenteron. Ainsi, l'endoderme supérieur et l'endoderme latéral deviennent continus. Archenteron a maintenant un mur d'endoderme tout autour.

Selon Balinsky (1981) et d'autres, le toit de l'archenteron est formé par le chorda-mésoderme et les futures cellules mésodermiques et endodermiques potentielles forment les côtés et le fond de celui-ci. Cette partie latérale et ventrale de la paroi archentérique se scinde en deux couches l'une du côté ectodermique et l'autre du côté de la cavité archentérique.

Le premier vers l'ectoderme est le mésoderme et l'autre vers l'archenteron est l'endoderme. Ces deux couches sont continues dorsalement avec le chorda-mésoderme. Le chorda-mésoderme et le mésoderme ensemble sont appelés le manteau chorda-mésodermique.

La division de l'ensemble du mésoderme n'a pas lieu en même temps. Il commence à la partie postéro-dorsale de la paroi de l'archenteron et la fente s'étend ventralement et aussi en avant. Le chorda-mésoderme ne participe pas à la scission.

Parmi ces trois points de vue concernant la formation du mésoderme chez la grenouille, les deux premiers ne sont pas largement acceptés par de nombreux chercheurs comme le troisième.

L'endoderme présumé se situe en partie dans la région végétative et en partie dans la région polaire animale. Ces deux parties s'invaginent de manières différentes et ainsi l'endoderme a une double propriété, il s'invagine et s'étend. Seule une petite couche superficielle de l'endoderme entourant l'archentéron est capable d'expansion, le reste est chargé de jaune et passif.

Développement de membranes fœtales chez le poussin :

Chez le poussin, la présence d'une énorme quantité de jaune et de vie embryonnaire à passer dans une coquille est corrélée au développement de membranes extra-embryonnaires. Le blastoderme originel est un petit disque qui se propage par expansion périphérique et recouvre finalement toute la surface de l'œuf.

Mais seule la région la plus centrale (zone pellucide) est directement liée à la formation de l'embryon proprement dit. Tout le reste du blastoderme (zone opaca) est extra-embryonnaire et c'est cette portion qui fournit la plupart des membranes fœtales.

Ces sacs sont des structures composites, qui impliquent deux couches germinales. L'amnios et le chorion sont composés d'ectoderme extra-embryonnaire et de couche somatique de mésoderme tandis que le sac vitellin et l'allantoïde sont composés d'endoderme extra-embryonnaire et de couche splanchnique de mésoderme séparés par un espace qui est le coelome extra-embryonnaire (Fig. 1).

Développement du sac vitellin :

Avec l'expansion du blastoderme, la splanchnopleure extra-embryonnaire continue de s'étendre sur la masse vitelline et finit par enfermer le jaune dans de grandes mesures et devient le sac vitellin. De plus, la splanchnopleure est pliée pour établir un tube digestif ou un intestin à parois dans le corps de l'embryon.

Le milieu de l'intestin reste cependant ouvert au jaune sur sa face inférieure et à ce niveau, les parois du sac vitellin restent en continuité avec les parois de l'intestin par une tige vitelline étroite, mais les réserves alimentaires du jaune ne sont pas transmises au embryon par la voie du jaune.

Le jaune est digéré ou rendu soluble pour être absorbé par la paroi endodermique du jaune et transporté jusqu'à l'embryon par la veine vitelline (Fig. 2). Chez les embryons plus âgés, l'épithélium du sac vitellin pénètre profondément dans le jaune et forme une série de plis, ce qui augmente considérablement sa surface d'absorption. Le sac vitellin comme le foie sert de lieu d'origine des cellules sanguines et remplit également des fonctions biochimiques, qui sont ensuite prises en charge par le foie.

Au cours du développement, l'albumine perd de l'eau, devient plus visqueuse et diminue rapidement de volume. La croissance de l'allantoïde force l'albumine vers l'extrémité distale du sac vitellin (Fig. 2 C). L'albumine est englobée par le sac vitellin, qui est absorbé et transféré par la circulation extra-embryonnaire à l'embryon.

À la fin de la période d'incubation, généralement le 19e jour, les restes du sac vitellin glissent à travers le nombril dans le ventre de l'embryon, où le contenu est complètement absorbé dans les six premiers jours après l'éclosion et la paroi corporelle se ferme derrière lui. .

Information additionnelle

Développement de l'amnios et du chorion :

L'amnios et le chorion sont développés simultanément. Environ après 30 heures d'incubation, la somatopleure extra-embryonnaire est élevée au-dessus de l'embryon par un processus de repliement consistant essentiellement en un doublement de la somatopleure sur elle-même.

L'élévation initiale se situe au-dessus de la tête de l'embryon, produisant un double capuchon somatopleurique, appelé pli amniotique céphalique. Au fur et à mesure que le pli amniotique céphalique s'étend vers l'arrière, ses membres latéraux s'étendant vers la caudale appelés plis amniotiques latéraux s'arquent sur l'embryon de chaque côté pour être finalement rejoints par un pli ou une élévation similaire au-dessus de la queue, le pli amniotique caudal.

Tous ces plis convergent finalement pour enfermer l'embryon dans deux feuilles de somatopleure de tous les côtés. La région d'union des plis amniotiques est appelée connexion séroamniotique. De plus, la feuille somatopleurique interne devient l'amnios et la feuille externe, le chorion.

La cavité entre l'amnios et l'embryon est tapissée d'ectoderme et est appelée cavité amniotique. D'autre part, la cavité située entre l'amnios et le chorion est la cavité chorionique et elle reste tapissée par le mésoderme de la somatopleure et du splanchnopleure qui est en fait le coelome extra-embryonnaire.

Fonctions de l'amnios et du chorion :

L'embryon en développement se trouve dans une cavité amniotique remplie de liquide. Le liquide amniotique salé fait tout ce qui est nécessaire pour éviter la dessiccation. Le liquide de la cavité amniotique est un amortisseur efficace et protège l'embryon d'éventuelles commotions cérébrales.

Des fibres musculaires non striées se développent dans le mésoderme de l'amnios au cinquième jour et produisent des vagues de contraction, berçant doucement l'embryon, empêchant ainsi son adhésion aux diverses membranes embryonnaires ou à la coquille ou de frottement contre elle et ne laissant aucune chance de stagnation du sang navires.

La formation de la cavité amniotique a un effet légèrement négatif (Balinsky, 1970). Il retire l'embryon de la surface de l'œuf et donc de la source d'oxygène. Le chorion fournit un parapluie protecteur supplémentaire sur l'embryon, et rejoint plus tard l'allantoïde et sert d'organe respiratoire.

Développement de l'allantoïde :

Vers le troisième jour d'incubation, la région du futur plancher de l'intestin postérieur commence à gonfler sous forme de vessie urinaire précoce, l'allantoïde. Son excroissance est constituée d'endoderme avec une couche de mésoderme splanchnique ou viscéral le convertissant de l'extérieur. Il se développe rapidement et pénètre dans le coelome extra-embryonnaire.

La partie distale de l'allantoïde se dilate et reste reliée à l'intestin postérieur de l'embryon au moyen d'une tige allantoïdienne étroite. Lorsque les plis du corps se contractent, séparant l'embryon des parties extra-embryonnaires, la tige allantoïdienne est enfermée avec la tige du sac vitellin, formant un cordon ombilical.

La partie distale de l'allantoïde s'aplatit et pénètre entre l'amnios et le sac vitellin d'un côté et le chorion de l'autre. Au milieu de la période d'incubation, l'allantoïde s'étend sur toute la surface de l'œuf sous le chorion. Bientôt, le mésoderme de l'allantoïde et du chorion s'unit pour former une seule couche mésodermique appelée chorio-allantois.

Pendant ce temps, le chrio-allantois en expansion éclate à travers la membrane vitelline de l'œuf et pousse vers l'extérieur vers la membrane de la coquille. Progressivement, il enveloppe l'albumine et devient un sac rempli d'albumine et s'appelle le sac d'albumine. Il aide à l'absorption de l'eau et de l'albumine.

Le réseau de vaisseaux sanguins se développe à la surface externe de l'allantoïde, communiquant avec l'embryon proprement dit par la tige allantoïdienne et le cordon ombilical. Cette communication se poursuit jusqu'à ce que le jeune poussin brise la coquille et commence à respirer l'air ambiant. Puis, les vaisseaux ombilicaux se ferment, la circulation cesse et l'allantoïde se dessèche et se sépare du corps du jeune poussin.

Fonctions de l'allantoïde :

L'Allantois est le réservoir de déchets azotés tels que l'acide urique insoluble formé par la dégradation de protéines et d'autres substances. Ces déchets formés dans l'embryon sont transmis dans l'intestin postérieur près de la base des canaux de Wolff, et de là, ils passent dans l'allantoïde.

L'allantois fonctionne également comme un «poumon» embryonnaire à travers lequel l'oxygène et le dioxyde de carbone sont échangés. La circulation allantoïque absorbe le calcium de la coquille et le transmet à l'embryon pour la croissance osseuse.

Développement de membranes fœtales chez les mammifères:

Les embryons en développement du lapin et d'autres mammifères eutheriens sont pourvus de quatre membranes fœtales ou extra-embryonnaires, à savoir l'amnios, le chorion, l'allantoïde et le sac vitellin comme chez le poussin. Mais chez les mammifères marsupiaux et placentaires, l'embryon dépend de la mère pour la nourriture et l'oxygène et l'élimination de ses propres déchets.

Les membranes fœtales commencent à se développer pendant que le contact avec la paroi utérine s'établit. Les membranes fœtales diffèrent nettement de celle du poussin dans le mode de leur formation et aussi dans leur morphologie. Différentes membranes extra-embryonnaires de mammifères se développent de la manière suivante.

Développement de l'amnios et du chorion :

Le développement de l'amnios et du chorion commence après la gastrulation et la neurulation sous la forme de plis de somatopleure (mésoderme somatique et trophoblastes ou ectoderme), appelés plis amniotiques. Ces plis provenant de l'extrémité antérieure ou céphalique de l'embryon sont les plis de la tête et ceux provenant de l'extrémité caudale ou de la queue sont les plis de la queue.

Ces deux plis se développent sur l'embryon et fusionnent l'un avec l'autre au niveau de la partie dorsale moyenne de l'embryon. Après la fusion des plis amniotiques, le corps de l'embryon s'enferme dans la cavité amniotique.

La somatopleure la plus interne ayant un ectoderme interne face à la cavité amniotique et un mésoderme externe, devient l'amnios, tandis que la somatopleure la plus externe des plis amniotiques ayant l'ectoderme à son côté le plus externe et le mésoderme à son côté forme le chorion (Fig. 3).

Chez les mammifères marsupiaux, le lapin, le porc, les lémuriens et la plupart des insectivores, la couche de trophoblaste précoce recouvrant le disque embryonnaire disparaît (Fig. 4 A-C). Le blastodisque exposé forme un groupe de cellules formatrices, des replis amniotiques qui se développent autour de l'embryon proprement dit de la même manière que chez les reptiles et les oiseaux.

Chez d'autres mammifères plus avancés, l'amnios est formé par une méthode différente. En eux, la cavité amniotique fait son apparition comme une fente dans la masse cellulaire interne. Cette méthode de formation d'amnios est appelée cavitation. Les cellules, situées au-dessus de la cavité, correspondent aux replis amniotiques (chorion et amnios). Les cellules, qui se trouvent sous la fente, c'est-à-dire entre la fente et le sac vitellin, forment l'embryon proprement dit.

Liquide amniotique (liqueur amnii) :

Le liquide amniotique des mammifères est un contenu aqueux légèrement alcalin du sac amniotique dans lequel grandit le fœtus. Chez l'homme, il s'agit d'un liquide incolore au début de la grossesse, qui prend progressivement une couleur paille pâle et, après trente-six semaines, il devient trouble en raison du mélange de vernix caseosa, de poils de lanungo et de cellules épithéliales fœtales.

Il est détecté à huit semaines de gestation et sa quantité par terme atteint en moyenne 600 ml. Il est hypotonique vis-à-vis du sérum maternel avec un pH de 7,1 et sa densité varie de 1,006 à 1,081 du début à la fin de la grossesse. L'origine de ce liquide est en partie maternelle et en partie fœtale.

En fin de grossesse après mélange d'urine fœtale, le liquide comprend des protéines (100-500 mg), de l'acide urique (4 mg), de la créatinine (91,8 mg) et du glucose (10-60 mg) par ml. De plus, il contient également des lipides, des phospholipides, du cholestérol, de la bilirubine, des hormones et des vitamines. Les électrolytes des sels de sodium (560-600 mg) et de potassium (280-310 mg) sont également des constituants inorganiques importants dans le liquide amniotique.

Le liquide amniotique circule constamment dans la cavité amniotique. Son eau est complètement changée et remplacée à un intervalle de 2 à 9 heures. L'échange d'eau se produit entre la circulation maternelle et la circulation fœtale et celle du liquide amniotique à un débit de 300-400 ml/h.

Fonctions du liquide amniotique :

Le liquide amniotique agit comme un coussin pour l'embryon en développement pendant la grossesse et fonctionne comme un amortisseur pour le fœtus. Il égalise les pressions à l'intérieur de la cavité amniotique maintient une température constante autour du fœtus empêche l'adhérence entre les parties fœtales et le sac amniotique, et permet ainsi la croissance et les mouvements du fœtus.

Pendant le travail, le liquide amniotique aide à la dilatation du passage de naissance par le coin liquidien du sac ou de l'amnios et des membranes choriales : protège le fœtus et le placenta de la pression exercée par l'utérus qui se contracte et lave le vagin avant la naissance du jeune en prévenant l'infection.

Le chorion développe des excroissances appelées villosités trophoblastiques, qui pénètrent dans les tissus de la paroi utérine et forment le placenta. Ces villosités augmentent considérablement la zone d'absorption et jouent un rôle principal dans la respiration et l'excrétion embryonnaires.

Fonction de l'aminion et du chorion :

L'amnion contient un liquide, le liquide amniotique, qui baigne à l'extérieur de l'embryon. Sa fonction est de libérer l'embryon des pressions pour permettre la liberté de mouvement et de protéger la surface externe de l'embryon de l'abrasion. Par conséquent, l'amnios peut être considéré comme une tente membraneuse autour de l'embryon.

Le chorion est le lieu d'échange de substances entre les tissus embryonnaires et le milieu maternel. Chez la plupart des mammifères, le chorion développe des excroissances plus ou moins complexes appelées villosités qui pénètrent dans les tissus de la paroi utérine et augmentent considérablement la surface du chorion.

Développement du sac vitellin :

Chez les mammifères, l'endoderme s'étend sur et entoure la cavité du sac vitellin et la couche splanchnique extra-embryonnaire du mésoderme recouvre plus tard l'endoderme du sac vitellin. La splanchnopleure du sac vitellin n'a pas de rôle digestif comme celui du poussin, mais elle a une fonction respiratoire, hémopoétique (formation des cellules sanguines) et de stockage.

Chez la plupart des marsupiaux, la paroi du sac vitellin établit un contact intime avec la paroi utérine, formant ainsi le placenta du sac vitellin. Cependant, chez la plupart des mammifères placentaires, le sac vitellin est petit et est séparé du chorion par le coelome extra-embryonnaire (Fig. 4 C).

L'embryon reste séparé de la masse vitelline par des plis corporels et relié à cette dernière par la tige vitelline. Plus tard, avec le développement progressif de l'allantoïde, le sac vitellin commence à se réduire et finalement à se ratatiner. Le pédoncule vitellin et le pédoncule allantoïdien constituent le pédoncule ventral ou ombilic, qui est recouvert d'un épithélium à une seule couche.

Développement de l'allantoïde :

L'allantois provient de l'intestin postérieur sous la forme d'une petite structure en forme de sac composée de splanchnopleure extra-embryonnaire. Il augmente progressivement de taille et se propage dans le coelome extra-embryonnaire et se développe sur l'embryon à l'extérieur de l'amnios. Les composants mésodermiques fusionnent plus tard avec le mésoderme du chorion pour former l'allanto-chorion et donner naissance au système vasculaire sanguin.

La muqueuse endodermique de l'allantoïde se réduit progressivement et reste rudimentaire, n'atteint jamais le placenta chez les rongeurs et les primates, tandis que la partie mésodermique, donnant naissance au système vasculaire de l'allantoïde, se développe progressivement. Ce brin mésodermique forme la tige de connexion ou la tige allantoïdienne à travers laquelle la circulation allantoïdienne s'établit pour un approvisionnement précoce en nourriture et en oxygène, et l'élimination des déchets.

Au cours du développement embryonnaire, l'allantoïde fonctionne comme la vessie mais avec l'acquisition de la viviparité, cette structure se perd complètement et disparaît. Les produits excréteurs libérés par l'embryon en développement diffusent dans le sang maternel et sont excrétés par les reins maternels. La circulation allantoïque fournit à l'embryon l'oxygène et les nutriments de l'organisme maternel.

Implantation chez les mammifères :

Chez la plupart des mammifères, l'embryon pénètre dans l'utérus au stade de blastocyste et s'attache à la paroi de l'utérus, où il subit un développement ultérieur.Cette fixation du blastocyste à la paroi utérine est connue sous le nom d'implantation.

Dans ce processus, l'épithélium tapissant la cavité de l'utérus est détruit en raison de l'activité des cellules trophoblastiques qui se développent pour devenir des cellules géantes et envahir le tissu utérin, jusqu'à ce que les vaisseaux sanguins maternels aient atteint et percé.

Au fur et à mesure que l'embryon se fixe, il établit un contact avec l'organisation maternelle. En raison de cette connexion entre l'embryon et la paroi utérine, l'embryon se nourrit. Le processus de gastrulation n'a lieu qu'après l'implantation et le développement des membranes fœtales se produit approximativement pendant cette période seulement.

Types d'implantation :

L'implantation peut être superficielle, interstitielle ou excentrique. Lors d'une implantation superficielle, le blastocyste s'attache à la surface de l'épithélium utérin et se trouve ainsi dans la cavité de l'utérus. Ce type d'implantation se trouve chez les carnivores, les insectivores et les singes.

Chez le hérisson, les chauves-souris, les singes et l'homme, un contact extrêmement intime entre les tissus fœtaux et maternels se développe tôt de sorte que le blastocyste pénètre profondément dans la paroi utérine, et le développement de l'embryon a lieu à l'intérieur de la paroi utérine. Ce type d'implantation est interstitielle. Le troisième type d'implantation connu sous le nom d'excentrique est observé chez le rat, l'écureuil, etc.

Dans ce type, le blastocyste repose pendant un certain temps dans un pli qui se détache de la cavité utérine principale (Fig. 5 A-C).

Chez le rat et la souris, la paroi utérine est préparée pour l'implantation par les activités conjointes des hormones ovariennes -progestérone et œstrogène. Un niveau élevé d'œstrogènes au moment de l'œstrus est nécessaire pour une sensibilisation optimale, suivi par la production de progestérone par les corps jaunes en développement. Les molécules d'œstrogène se fixent rapidement aux récepteurs cytoplasmiques dans l'utérus et passent du cytoplasme au noyau, où ils sont associés à la chromatine.


Définition

Blastule : Blastula est un embryon animal au stade précoce de développement lorsqu'il s'agit d'une boule creuse de cellules.

Gastrula : La gastrula est un embryon au stade suivant la blastula, lorsqu'il s'agit d'une structure creuse en forme de coupe comportant trois couches de cellules.

Formation

Blastule : La blastula est formée à partir de la morula dans le processus appelé blastulation.

Gastrula : La gastrula est formée à partir de la blastula dans le processus appelé gastrulation.

Élaboration

Blastule : Des divisions cellulaires mitotiques rapides entraînent la blastula.

Gastrula : Des divisions cellulaires mitotiques lentes entraînent la gastrula.

Structure

Blastule : Blastula est une structure creuse monocouche.

Gastrula : Gastrula est une structure creuse à trois couches.

Mouvement des cellules

Blastule : Les cellules de la morula ne montrent aucun mouvement lors de la formation de la blastula.

Gastrula : Les masses cellulaires migrent de la surface de la blastula lors de la formation de la gastrula.

Nombre de cellules

Blastule : Blastula contient 128 cellules.

Gastrula : La gastrula contient plus de cellules que la blastula.

Différenciation cellulaire

Blastule : Blastula comprend des cellules indifférenciées.

Gastrula : Gastrula comprend des cellules différenciées.

Zone Pellucide

Blastule : Blastula comprend une zone pellucide.

Gastrula : Gastrula n'a pas de zone pellucide.

Conclusion

Blastula et gastrula sont deux stades embryonnaires multicellulaires d'animaux. La principale différence entre la blastula et la gastrula réside dans la structure et les composants de chacun des stades embryonnaires. La blastula se développe à partir de la morula dans un processus appelé blastulation. Il se compose d'une masse cellulaire interne qui se développe en embryoblaste. La couche cellulaire externe est le trophoblaste, qui donne naissance au placenta. La gastrula se développe à partir de la blastula dans un processus appelé gastrulation. Des mouvements massifs de masses cellulaires dans la blastula développent les trois couches germinales primaires : endoderme, ectoderme et mésoderme.

Référence:

1. “Blastocyst Formation – Boundless Open Textbook.” Boundless. N.p., 31 oct. 2016. Web. Disponible ici. 10 juin 2017.
2. Bowen, R. “Cleavage and Blastocyst Formation.” N.p., s.d. La toile. Disponible ici. 10 juin 2017.
3. “Gastrula.” Encyclopædia Britannica. Encyclopædia Britannica, inc., s.d. La toile. Disponible ici. 10 juin 2017.
4.”Gastrula : définition et concept.” Study.com. N.p., s.d. La toile. Disponible ici. 10 juin 2017.
5. “Gastrulation et les 3 couches germinales (ectoderme, endoderme et mésoderme).” Study.com. N.p., s.d. La toile. Disponible ici. 10 juin 2017.

Image de courtoisie :

1. "Anatomie et physiologie des animaux Développement et implantation de l'embryon" Par Sunshine Connelly (CC BY 3.0) via Commons Wikimedia
2. “Blastula” Par Abigail Pyne – Travail personnel (domaine public) via Commons Wikimedia

À propos de l'auteur : Lakna

Lakna, diplômé en biologie moléculaire et biochimie, est biologiste moléculaire et s'intéresse de près à la découverte des choses liées à la nature.


Voir la vidéo: Andrewsarchus vs Embolotherium Brontotherium vs Indricotherium RUS (Juillet 2022).


Commentaires:

  1. JoJok

    C'est une pièce remarquable, très amusante

  2. Kosumi

    pas très impressionnant

  3. Colin

    Je suis sûr que vous êtes confus.

  4. Malkis

    Je suis désolé, cela ne me convient pas. Peut-être y a-t-il plus d'options?



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